高原环境影响治疗监测药物代谢的研究进展

高子昭; 王荣; 赵安鹏

doi:10.3969/j.issn.1006-0111.201912096

高原环境影响治疗监测药物代谢的研究进展

doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.201912096

高子昭^{1, 2,},
王荣^{1, 2, ,},
赵安鹏²

1.
宁夏医科大学药学院，宁夏银川 730000
2.
中国人民解放军联勤保障部队第九四〇医院全军高原医学实验室，甘肃兰州 730050

基金项目: 国家科技重大专项（2018ZX09J18109-001）；国家自然科学基金（81403004，81401552，81673508）；全军后勤科研”十二五”重大项目（AWS14L0005）；全军医学科研"十二五"重点项目（BWS12J012）；甘肃省自然基金（145RJZA111）

详细信息

作者简介:
高子昭，硕士生，研究方向：高原低氧药动学，Email：841637186@qq.com

通讯作者: 王　荣，博士，教授，博士生导师，研究方向：药物分析与药物代谢，Email：wangrong-69@163.com

中图分类号: R969

Advances in research on the impact of the plateau environmental on the drug metabolism

GAO Zizhao^{1, 2
,},
WANG Rong^{1, 2
, ,},
ZHAO Anpeng²

1.
College of Pharmacy, Ningxia Medical University, Yinchuan 730000, China
2.
The PLA Plateau Medical Laboratory of No. 940 Hospital of Joint Logistic Support Force, Lanzhou 730050, China

摘要: 高原环境会影响药物在体内的代谢，使得药动学参数、药物代谢酶及转运体的表达及功能均会发生变化。随着医药行业的快速发展，治疗药物监测（TDM）作为个体化用药的依据被广泛的关注，高原环境对监测药物有何影响?笔者通过查阅国内外相关文献，对临床上常用的治疗监测药物种类、治疗窗以及检测血样进行了归纳和总结，分析高原低氧环境对临床常用监测药物代谢的影响。为高原临床治疗药物监测提供参考，更好的保证高原人群合理用药，也为后期课题组开展高原治疗药物监测以及研究药物的遴选提供参考。
- 治疗药物监测 /
- 治疗窗 /
- 药物代谢 /
- 高原低氧 /
- 合理用药
Abstract: Plateau environment will affect the metabolism of drugs in the body, which will cause changes in pharmacokinetic parameters, expression and function of drug metabolizing enzymes and transporters. With the rapid development of the pharmaceutical industry, therapeutic drug monitoring (TDM) has been widely paid attention to as a basis for personalized drugs. What impact does the plateau environment on monitoring drugs? In this literature review, we will summarize the types of commonly used therapeutic monitoring drugs, therapeutic windows, and blood samples, analyze the effects of plateau hypoxic environment on the metabolism of commonly used monitoring drugs, provide a reference for the clinical treatment and monitoring drugs of plateau, better ensure the rational use of drugs in the plateau population, and also provide a reference for the later research group to conduct the monitoring of plateau therapeutic drugs and the selection of research drugs.
- therapeutic drug monitoring /
- therapeutic window /
- drug metabolism /
- plateau hypoxia /
- rational use

生脉注射液临床上常用于辅助治疗心肌梗塞、心源性休克、脓毒症和感染性休克。心肌梗塞引起组织产生大量氧自由基，直接损伤心肌细胞并触发细胞凋亡，免疫介导的炎症损伤会加大心梗范围和心梗损伤^[1]。心源性休克激活的炎症反应可诱导产生大量NO，促进细胞凋亡^[2]。脓毒血症是由细菌引起的全身性炎症，大量致炎因子破坏机体的免疫平衡，从而导致机体代谢紊乱^[3]，严重者可能引起感染性休克。本研究特选择抗氧化及抗炎能力作为生物效应指标，考察生脉注射液质量与生物效应之间的相关性。

课题组前期对生脉注射液中11种成分^[4]进行了指认并进行了定量，均符合药典标准。药理学实验表明，生脉注射液中人参皂苷、木质素和麦冬皂苷等多种化学成分均在细胞及动物模型上表现出良好的抗炎效果^[5-8]，且临床研究表明其可以通过抗炎通路发挥对器官损伤的保护作用^[9-10]。现今生物效应评价在中药材和中成药质量控制研究中有所应用^[11-12]，2015版《中国药典》收录了生物活性测定法作为质量控制标准，如洋地黄生物测定法和黄体生成素生物测定法，说明通过生物效应控制药品质量是可行的。

抗炎和抗氧化损伤是生脉注射液产生药理作用的重要机制，但现今的质量标准仅对化学成分进行定性定量分析，不能全面体现其整体的药效活性，为此，本研究尝试通过评价其抗氧化能力以及抗炎活性，建立有效的生脉注射液生物学质量控制方法。

1. 材料

1.1 试剂与药品

二苯基苦基苯肼（DPPH，质量分数≥97%，含10%～20%苯，批号：PRPDE-JO，梯希爱（上海）化成工业发展有限公司）；水溶性维生素E (Trolox)、DMEM培养基和磷酸盐缓冲液(PBS)均购自北京Solarbio公司；胎牛血清（FBS，德国PAN Seratech公司）；N-硝基-L-精氨酸甲酯（L-NAME）、NO检测试剂盒（上海碧云天生物技术有限公司）；无水乙醇（北京化工厂）；水（屈臣氏）。

9批次生脉注射液分别由5个不同厂家生产，样品详细情况见表1。

表 1 生脉注射液样品来源、批号及有效成分含量(μg/ml)^[4]

编号	生产厂家	批号	规格	人参皂苷Rb1	人参皂苷Re	人参皂苷Rg1	五味子醇甲	麦冬皂苷D
S1	A	16120401005	10 ml/支	61.16	51.39	84.69	51.43	1.48
S2	B	160502	10 ml/支	101.69	55.61	88.99	73.09	3.42
S3	C	17071014	10 ml/支	56.99	44.87	80.42	36.78	1.68
S4	C	17040423	20 ml/支	63.12	44.51	81.54	39.63	1.28
S5	D	1704252	20 ml/支	77.15	62.10	86.11	29.05	3.62
S6	E	17091302	10 ml/支	85.52	57.74	88.45	33.55	1.40
S7	E	17092903	10 ml/支	80.43	41.52	86.36	37.30	1.33
S8	E	17061103	20 ml/支	74.88	61.06	80.00	35.18	1.72
S9	E	17053005	20 ml/支	79.97	48.54	80.34	44.83	1.59

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1.2 主要仪器及设备

电子分析天平（AB265-S，梅托勒-托利多有限公司）；超声波清洗仪（B25-12DT，宁波新芝生物科技股份有限公司）；TS-2000A脱色摇床（海门市其林贝尔仪器制造有限公司）；96孔板、多功能连续波长酶标仪（InfiniteM1000，TECAN公司）；低速离心机（SC-3610，安徽中科中佳科学仪器有限公司）；二氧化碳培养箱（MCO-15AC，三洋电机株式会社）。

1.3 细胞培养

RAW264.7细胞为小鼠单核巨噬细胞，购于中国医学科学院基础医学研究所细胞中心。培养条件：完全培养基为含10%FBS的DMEM培养基，在37℃含5% CO₂的培养箱中培养。每天换液，细胞生长达对数生长期时，传代（传代比例为1:6）并开展实验，实验用细胞控制在10代以内。

2. 方法与结果

2.1 DPPH法评价生脉注射液质量

2.1.1 实验过程

取96孔板，每孔依次加入100 μl初浓度2.0%的受试液、100 μl 0.5 mmol/L DPPH溶液，震荡均匀后避光反应20 min。

测定方法：每孔依次加入100 μl受试液和DPPH溶液，在摇床上振荡均匀，避光反应20 min后，用酶标仪测定波长在517 nm处的吸光度。

2.1.2 方法学考察

考察内容：①线性关系：分别吸取样品编号为S9的药液，用纯水定容得到浓度为8%的生脉注射液受试液。逐级稀释，测定其吸光度并计算该浓度下的平均吸光度。以终浓度为横坐标（X），平均吸光度为纵坐标（Y），绘制标准曲线，得到的线性关系方程为Y=-0.2081X+1.2209（r=0.9996）（图1-A），表明生脉注射液具有较强的DPPH自由基清除能力且具有浓度依赖性，体积浓度和平均吸光度具有良好的线性关系，在0%~2.0%范围内线性关系良好。②精密度：取样品S9，配制得到浓度2.0%的受试液，设置平行复孔，按照“2.1.1”项下操作测定吸光度，计算其吸光度的RSD值为2.25%（见表2），表明该方法满足方法学精密度要求。③重复性：取样品S9，配制得到浓度2.0%的受试液，设置平行复孔，按照"2.1.1“项下操作测定吸光度，计算其平均吸光度的RSD值为2.21%（见表2），表明该方法满足方法学重复性要求。④稳定性：取样品S9，分别于0、4、8、24、48和72 h，配制得到浓度2.0%的受试液，设置平行复孔，按照“2.1.1”项下操作测定吸光度，计算其平均吸光度的RSD值为2.47%（见表3），表明该方法在72 h内稳定性良好。

图 1 生脉注射液抗氧化生物活性评价

A. 生脉注射液对DPPH清除作用的标准曲线；B. Trolox对DPPH清除作用的标准曲线；C. 1.0%各批次生脉注射液相当于Trolox的量（mmol/L）

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表 2 1.0%生脉注射液对DPPH清除作用的精密度和重复性考察

编号	精密度试验			重复性试验
编号	吸光度	均值	RSD(%)	吸光度	均值	RSD(%)
1	1.063 4	1.087 9	2.25	1.138 9	1.135 6	2.22
2	1.115 6			1.175 6
3	1.098 3			1.135 7
4	1.114 3			1.096 7
5	1.064 9			1.129 2
6	1.070 9			1.137 7

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表 3 1.0%生脉注射液对DPPH的清除作用的稳定性

时间	吸光度	均值	RSD(%)
0	1.038 5	1.078 8	2.47
4	1.105 7
8	1.072 2
24	1.080 5
48	1.065 7
72	1.110 0

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2.1.3 生脉注射液抗氧化生物活性的质量评价

精密称定Trolox，加入100 μl无水乙醇溶解，纯水定容，得到初浓度为15.46 mmol/L的Trolox溶液。将其逐级稀释，按照“2.1.1“项下操作测定并计算平均吸光度，以终浓度为横坐标（X），平均吸光度为纵坐标（Y），绘制标准曲线。得到的线性关系方程为Y=–0.0789X+1.1674（r=0.9951）（见图1-B），表明Trolox清除DPPH能力在作用浓度0.43~5.56 mmol/L范围内具有良好线性关系。

将9批次生脉注射液清除DPPH自由基的结果与Trolox比较，折算得到各批次生脉注射液相当于水溶性Trolox的作用浓度（见图1-C）。结果表明，终浓度1.0%的各批次生脉注射液清除自由基能力相对于Trolox作用浓度范围为1.2~1.9 mmol/L，在清除自由基即抗氧化能力方各批次不存在较大差异。

2.2 Griess试剂盒评价生脉注射液的抗炎活性

2.2.1 Griess试剂盒测定生脉注射液抑制NO释放能力

使用完全培养基配制为1.2%的生脉注射液样品溶液，及初浓度100μg/ml的LPS样品溶液。

取对数生长期的RAW264.7细胞，制备成2×10⁶个/ml的细胞悬液，以每孔100 μl注入96孔板。培养24 h后，弃去培养基，每孔加入100 μl样品溶液和100 μl的LPS溶液，孵育24 h后吸取50 μl上清液，按照Griess试剂盒说明书操作，用酶标仪测定波长540 nm处的吸光度。

2.2.2 方法学考察

考察内容：①线性关系：精密吸取样品编号为S6的药液，用完全培养基制成浓度为4.0%的溶液。逐级稀释，测定吸光度并计算该浓度下的平均吸光度。以终浓度为横坐标（X），平均吸光度为纵坐标（Y），绘制标准曲线。得到线性方程为Y=–0.033ln(X)+0.243（r=0.9961）（见图2-A），表明生脉注射液具有良好的NO分泌抑制能力并具有浓度依赖性，终浓度和平均吸光度之间具有良好的线性关系，在0.2%~2.0%范围内线性关系良好。②精密度：取样品S6，配制得到浓度为1.2%的受试液，设置平行复孔，按照“2.1.1“项下操作测定吸光度，计算其吸光度的RSD值为1.71%（见表4），表明该法满足方法学精密度要求。③重复性：取样品S6，配制得到浓度为1.2%的受试液，设置平行复孔，按照“2.1.1“项下操作测定吸光度，计算其平均吸光度的RSD值为2.79%（见表4），表明该法满足方法学重复性要求。④稳定性：取样品S6，分别于0、4、8、24和48 h时，配制得到浓度1.2%的溶液，设置平行复孔，按照“2.1.1”项下操作测定吸光度，计算其平均吸光度的RSD值为2.66%（见表5），表明该方法在48 h内稳定性良好。

图 2 生脉注射液抗炎活性评价

A. 生脉注射液对RAW264.7细胞分泌NO的标准曲线；B. L-NAME对RAW 264.7细胞分泌NO的标准曲线；C. 0.60%各批次生脉注射液相当于L-NAME的量（mmol/L）

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表 4 1.2%生脉注射液对LPS刺激264.7细胞分泌NO的精密度和重复性考察

编号	精密度试验			重复性试验
编号	吸光度	均值	RSD(%)	吸光度	均值	RSD(%)
1	0.276 0	0.272 9	1.71	0.272 9	0.285 0	2.79
2	0.272 3			0.281 1
3	0.265 0			0.289 0
4	0.276 1			0.291 6
5	0.275 0			0.290 6

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表 5 1.2%生脉注射液对LPS刺激264.7细胞分泌NO的稳定性考察

时间	吸光度	均值	RSD(%)
0	0.264 5	0.262 3	2.66
2	0.273 6
4	0.257 4
24	0.257 4
48	0.258 6

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2.2.3 生脉注射液抗炎生物活性的质量评价

精密称定eNOS抑制剂L-NAME，逐级稀释，按照“2.1.1“项下操作，测定并计算平均吸光度，以终浓度为横坐标（X），平均吸光度为纵坐标（Y），绘制标准曲线。得到线性关系方程为Y=–0.052ln(X)+0.152（r=0.9957）（见图2-B），表明L-NAME抑制NO分泌能力在0.05~0.55 mmol/L范围内具有良好线性关系。

将9批次生脉注射液抑制NO分泌能力的结果与L-NAME比较，折算得到各批次生脉注射液相对于L-NAME的作用浓度（见图2-C）。

结果显示，除S2和S8样品外，终浓度0.6%的各批次生脉注射液对应的L-NAME浓度范围均在0.06~0.16 mmol/L范围内，表明在抑制NO分泌能力即抗炎能力方面S2和S8与其他样品存在较大差异。其中S2对应的L-NAME浓度远高于其他样品，其抗炎活性远高于其他样品组，推测这可能与化学成分含量差异有关，需要后续的实验加以证实。

3. 讨论

3.1 实验方法及阳性对照药的选择

测定抗氧化活性常用的方法有氧化自由基吸收能力（ORAC）、二苯基苦基苯肼（DPPH）法和总抗氧化能力检测（ABTS）法等，本实验首先采用DPPH法测定抗氧化能力，该方法操作简便，常用于体外评价化合物的抗氧化活性，其中Trolox和维生素C是常用的抗氧化剂对照药^[13-14]，但相较之下，Trolox可通过清除自由基产生抗氧化机制，且具有剂量依赖性^[15]，而维生素C稳定性较Trolox差，所以该方法选择了该药作为阳性对照。内皮型一氧化氮合酶（eNOS）诱导产生NO是NO产生的重要途径^[16]，L-NAME作为eNOS抑制剂，选择其作为对照药可以更加直观地评价药物对细胞产生NO的抑制能力。

3.2 结果分析

参考2015版药典生物测定方法，该试验通过测定生脉注射液的抗炎和抗氧化能力，初步建立了生脉注射液的生物效应质量控制方法，该方法不仅能满足方法学要求，而且可以克服现行质量控制方法的局限性，还可以有效的评价中药复方制剂在治疗过程中产生的效应强度，实现“质-量-效”的有效结合^[17]。

4. 展望

中药复方是一个组分复杂，不仅化学成分复杂，未知组分众多，而且其可能通过不同成分的配伍产生作用机制，即其药理机制不是单一化学成分能够阐明的，因此，仅对中药复方的化学成分进行评价难以对其成分及作用进行全面阐述。生物效应质量控制方法能对中药复方的整体组分药效进行把控，从药理活性方面评价中药复方质量，弥补现有质控方法的不足。在生物效应质控方法建立过程中，应注意以下问题：①质控方法应根据药效及药理机制研究选择合适的生物效应指标，充分反映该药的药理活性特征；②选择的对照药应具有足够的专属性、关联性和可测性，能够充分准确地反映药物的生物效应^[18-20]。参考已有的生物质量控制研究^[11，21]并对生脉注射液可能的药理活性进行筛选，对此进行考察。重点考察其方法学验证，结果显示该方法可行性高，方法学符合生物效应评价要求，可以反映生脉注射液的整体生物效应。但抗炎活性的测定实验要求较高的实验操作，且该方法对中药复方的整体生物活性进行测定，并未对可能产生药理活性的化学组分和含量进行探究和测定，可能产生药理活性的化学成分及作用机制尚不明确，值得后续的探讨。

表 1 临床常用治疗监测药物的治疗窗

类别	代表药物	血样	治疗窗
免疫抑制剂	他克莫司	全血	5−10 ng/ml
	环孢霉素	全血	150−400 ng/ml
抗菌药	万古霉素	血清	10−15 μg/ml
	替考拉宁	血浆	ρ_min≥10 μg/ml(非复杂感染)
			20−60 μg/ml(深部复杂感染)
平喘药	氨茶碱	血清	10−20 mg/ml
		血浆	55−110 μmol/L
抗癫痫药	丙戊酸	血清	50−100 μg/ml
	苯巴比妥	血清	10−40 μg/ml
	卡马西平	血清	4−12 μg/ml
心血管系统药物	地高辛	血清	0.8−2.0 ng/ml

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期刊类型引用(4)

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4.	万茹茹，陈国国，范学姣，张浩，李岩峰，庞现红. 照山白内生真菌的分离及化学成分高分辨质谱鉴定. 山东化工. 2021(18): 76-79 . 百度学术

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表(1)

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1. 材料
1.1 试剂与药品
1.2 主要仪器及设备
1.3 细胞培养
2. 方法与结果
2.1 DPPH法评价生脉注射液质量
2.2 Griess试剂盒评价生脉注射液的抗炎活性
3. 讨论
3.1 实验方法及阳性对照药的选择
3.2 结果分析
4. 展望

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近年来随着医药行业的快速发展，治疗药物监测愈益成为临床药物治疗工作的一项重要内容，也是个体化用药指导的重要手段之一。治疗药物监测^[1]（therapeutic drug monitoring，TDM），其目的是通过测定血液中或其他体液中药物的浓度并利用药动学的原理相应调整药物剂量，使给药方案个体化，以提高药物的疗效，避免或减少毒副反应；同时也为药物过量中毒的诊断和处理提供实验室依据，简而言之就是对药物浓度的评估^[2]。药物治疗窗(therapeutic drug window)指药物产生最小治疗效应与机体能耐受的最小中毒反应间的血药浓度范围，是TDM的临床用药依据。目前临床上开展TDM的药物涉及多种类、多监测方法，但TDM的治疗窗和血样却没有很好的分析、归纳及总结。前期课题组研究表明^[3-4]，高原环境对药物代谢酶、转运体的活性及蛋白表达均有一定的影响，导致高原环境下药动学参数发生变化，而药动学参数是指导临床合理用药的重要理论依据，直接关系到给药的剂量及给药时间，那么高原低氧环境对临床常用监测药物的代谢是否会产生影响?本文将对临床上常用的治疗监测药物种类、治疗窗、以及检测血样进行归纳和总结，分析高原环境下对临床常用监测药物代谢的影响，一方面有利于指导临床合理用药、毒性反应评估、引导个体化用药；另一方面，为本课题组进一步研究高原环境下开展TDM提供理论指导。

1. TDM药物种类及治疗窗

随着TDM研究的不断深入，王菁等人^[5]归纳了临床上遴选TDM遵循的八条原则。即行TDM的药物具有自身治疗指数低、治疗窗窄、毒性较大、非线性药动学特征和个体差异较大，以及联合用药时会发生相互作用，导致血药浓度变化等特点。目前，需TDM的药物种类主要包括免疫抑制剂，如他克莫司(FK506)、环孢霉素(CsA)；抗菌药，如万古霉素、替考拉宁；平喘药，如氨茶碱；抗癫痫药，如丙戊酸(VPA)、卡马西平(CBZ)、苯巴比妥；心血管系统药物，如地高辛；抗心律失常药物，如普鲁卡因胺、利多卡因、奎尼丁；抗肿瘤药，如甲氨蝶呤(MTX)；抗抑郁药，如丙咪嗪、阿米替林、碳酸锂，等等。由于这些药物个体差异大，容易在同等剂量出现毒副反应或达不到相应的疗效，因此，临床上需要做TDM。使监测药物的血药浓度控制在治疗窗内，是保证患者安全、有效的用药关键。以下将临床上常用TDM药物的治疗窗及血样进行分类(表1)。

表 1 临床常用治疗监测药物的治疗窗

类别	代表药物	血样	治疗窗
免疫抑制剂	他克莫司	全血	5−10 ng/ml
	环孢霉素	全血	150−400 ng/ml
抗菌药	万古霉素	血清	10−15 μg/ml
	替考拉宁	血浆	ρ_min≥10 μg/ml(非复杂感染)
			20−60 μg/ml(深部复杂感染)
平喘药	氨茶碱	血清	10−20 mg/ml
		血浆	55−110 μmol/L
抗癫痫药	丙戊酸	血清	50−100 μg/ml
	苯巴比妥	血清	10−40 μg/ml
	卡马西平	血清	4−12 μg/ml
心血管系统药物	地高辛	血清	0.8−2.0 ng/ml

并非所有的药物都需要做血药浓度监测，一些有显著效果指标的药物，如降压药(如硝苯地平、厄贝沙坦、卡托普利等)，其临床的治疗效果可以直接通过测定患者血压数值来反映降压的程度，进而根据血压数值调整用药的剂量；新型广谱唑类药物艾沙康唑(isavuconazole)目前也不需要TDM^[6]。对于上述治疗窗宽、安全范围广的药物进行血药浓度监测和药代动力学参数的研究并没有多少实际意义。

进行监测的药物血样^[7]主要有全血、血浆及血清等，监测血样的确定主要根据药物与血浆蛋白、红细胞结合率，以及游离状态来决定，以便更好的评价血药浓度，指导临床个体用药剂量。当药物主要与血液中红细胞结合时，监测的血样一般选择全血；药物与血浆蛋白结合率高时，主要以游离态来发挥作用时，选择血清为监测的血样结果会更加准确。例如，免疫抑制剂他克莫司、环孢霉素，监测的血样为全血，因为多数他克莫司与血液中红细胞结合，少数与血浆中的脂蛋白结合^[8-9]；环孢霉素也在血浆中与血浆蛋白和红细胞的结合率高^[10]。由于他克莫司、环孢霉素与红细胞有较高的结合率，因此，必须以全血为血样，以保证监测的浓度结果更加可靠、准确、稳定，但在测定全血时干扰物质较多，全血处理也要有严格的要求[雅培公司所产的全自动免疫分析仪(型号：AR i1000SR)在测定血样前需加入全血沉淀试剂]；而抗癫痫药丙戊酸的监测血样为血清，因为丙戊酸80%～90%处于与血浆蛋白结合状态，主要以游离态发挥作用^[11]，因此，丙戊酸以血清来评价血药浓度。研究表明^[12]，在血清中加入适量的高丰度蛋白质去除试剂乙腈，不仅能够有效沉淀蛋白，减少对血药浓度的影响，还能减弱加入内标提取液引起的乳化现象，使临床监测更加简便、经济。

2. 高原环境对TDM药物代谢的影响

高原环境具有低氧、低温、低气压、高辐射等基本特点，其中低氧是影响药物代谢的主要因素，低氧环境中药物蛋白结合率、器官血流量、代谢酶及转运体的表达及功能均会发生变化^[13-14]。而这些变化会导致高原环境下药动学参数的改变，而药动学参数是指导临床合理用药的重要理论依据，直接关系到给药的剂量及间隔。TDM药物的代谢与血浆蛋白结合率、局部器官的血流量、代谢酶及转运体有直接的关系，也就是说高原环境的特殊性对TDM代谢也会有很大的影响，这些因素影响会使TDM药物的血药浓度发生改变，进而导致药动学参数发生变化，使高原人群的用药剂量存在风险。因此探究高原环境下TDM代谢发生的变化，对保证高原人群安全、合理、有效的用药具有重大意义。

2.1. 高原环境对TDM血浆蛋白结合率的影响

药物与血浆蛋白结合率是影响药物在体内分布的重要因素，蛋白结合率高的药物在体内消除慢，作用维持时间长。药物进入循环后首先与血浆蛋白成为结合型药物，未被结合的药物称为游离型药物，两种类型的药物处于动态的平衡状态，仅游离型药物才能转运到作用部位产生药理效应。药物的血浆蛋白结合率会严重影响机体对药物的分布、排泄和代谢，从而影响药物作用强度和持续时间，加大了不良反应的发生率。高原环境对不同药物的血浆蛋白结合率具有不同的影响。如呋塞米、美托洛尔的蛋白结合率无显著性差异；而醋甲唑胺、普萘洛尔蛋白结合率显著性增高^[15]。

临床上常用的监测药物种类多，不同药物在高原环境中血浆蛋白结合率不同，导致药物临床药效不同。课题组前期研究表明^[16]，监测药物氨茶碱平原组与高原组Wistar大鼠血浆蛋白结合率分别为37.05%和74.17%，急进高原组的血浆蛋白结合率比平原组显著高37.12%，具有较高的血浆蛋白结合率，导致药物的浓度增大，体内驻留时间缩短，若按照平原给药的标准很有可能发生不良反应。高原环境对TDM药物的血浆蛋白结合率的影响会使体内药物浓度发生改变，进而导致TDM药动学参数的变化。

2.2. 高原环境对局部器官血流量的影响

人体脏器的血流量分布以肝最多，肾、脑、脾、心次之。肝是代谢药物的主要场所，进入高原机体对器官的血流增多，红细胞对血管的黏附也增强^[17]，血液黏稠度会增高，肾血流量减少，尿量减少，导致药物在体内的蓄积；脾是重要的免疫器官，其血流量显著增加到6.70±1.84(P<0.01)^[18]，使脾脏过负荷，导致脾肿大生理功能下降。

高原环境对器官血流量的影响，导致TDM药物的排泄发生变化。如地高辛在体内消除主要是以原型药经肾小球滤过或肾小管分泌排泄，尿中排出量为用量的50%~70%，仅约10%左右在肝代谢，另有7%左右处于肠肝循环。因此，高原环境中，地高辛经尿液的排出量减少，造成其在体内造成大量的蓄积，毒副作用也随之产生，即主要经肾排泄的TDM药物(VPA、苯巴比妥)，在高原低氧的状态下应对可能产生的毒副反应进行监测，防止不良反应的发生。高原环境对器官血流量产生的影响，导致TDM药物的排泄发生改变。

2.3. 高原环境对TDM代谢酶的影响

大多数药物代谢主要在肝脏中进行，肝细胞中的药物代谢酶会参与药物的代谢，肝脏微粒体酶系(细胞色素P450酶系)是促进药物转化的主要酶系统。CYP450酶系是一个基因超家族，临床中90%以上经肝脏代谢的药物是经过CYP450酶系亚酶代谢的，已有大量研究表明高原低氧导致酶的活性或表达降低，影响机体对大部分药物的生物转化率及清除率，减缓药物在体内的代谢，可能增加药物的毒副作用。

治疗监测药物的代谢也需要代谢酶的参与。如免疫抑制剂、环孢霉素主要通过CYP3A4和CYP3A5代谢^[19-20]；氨茶碱通过CYP1A2代谢^[21]；抗癫痫药丙戊酸的代谢过程受到尿苷二磷酸葡萄糖醛酸基转移酶(UGT酶)和细胞色素酶(CYP)影响^[22]；苯巴比妥在肝脏中主要被CYP2C9代谢，而CYP2C19和CYP2E1代谢较少^[23]。课题组前期研究表明^{[3-4, 24-25]}，在高原低氧环境中，上述药物的代谢亚酶CYP3A4、CYP3A5、CYP1A2、CYP2C9及 UGT的mRNA与蛋白表达均下降，导致酶活性降低，这会使体内TDM药物的代谢减慢，半衰期延长，甚至使体内的药物浓度过大，造成药物及其代谢物在体内的大量蓄积，直接关系到患者用药的剂量及间隔。因此，高原环境对不同代谢酶的影响，TDM药物的代谢参数也将发生变化。

2.4. 高原环境对TDM转运体的影响

药物转运体是转运药物透过细胞膜进入体内和产生药效的关键因素，其广泛分布在小肠绒毛上皮细胞、肾小管上皮细胞、肝细胞，其在药物代谢的各个环节中发挥着重要的作用。同一个转运体可在多个正常器官和组织中表达，而同一个组织和器官也可表达多个转运体。药物转运体分两类：ABC族转运蛋白和SLC族载体转运蛋白。P-糖蛋白(P-gp)是人体重要的ABC族外运蛋白，其存在于肝、肾、小肠、胎盘屏障和血脑屏障等组织器官中，其主要功能是将药物摄取或外排出细胞，从而影响体内代谢的各个过程。Rohwer等^[26]总结了不同肿瘤细胞中P-gp 的变化，发现低氧诱导因子使转运体蛋白高表达，从而影响化疗药物的疗效。本课题组^[4,27-28]研究了高原实地低氧环境中大鼠体内转运体的变化情况，高原低氧组小肠组织中P-gp mRNA与蛋白的相对表达水平分别下调50.80%和71.30%(P<0.05)，高原低氧会导致小肠中P-gp的表达下调，使其底物的外排减少，增加其底物在肠道的吸收；肝脏中P-gp mRNA与蛋白的相对表达量分别上调了1.15倍和1.33倍；肾脏中分别上调了49.0%和1.83倍；高原组(海拔4 010 m)与平原组比，大鼠血脑屏障（BBB）组织中P-gp mRNA与蛋白相对表达量分别显著上调了2.18倍和2.58倍(P<0.05)，随着表达量的升高，介导药物的外排增多，进入脑内的药量减少，疗效减弱。这些研究表明高原低氧条件下各组织中P-gp表达量均会发生明显的变化，影响药物在体内各组织的转运，代谢发生变化。

临床常用TDM：他克莫司、环孢霉素、卡马西平、丙戊酸都是P-gp的底物药物^[29]，也会受到高原环境的影响，导致药物在不同组织中发生不同的变化。如，抗癫痫药丙戊酸、苯巴比妥、卡马西平需要通过血脑屏障来发挥作用，高原环境会使这类药物进入脑内的药量减少、导致药效大大减弱。如果沿用平原的给药标准那么很有可能无法达到预期疗效。因此，必要研究TDM药物在高原低氧环境下的代谢变化，保证高原人群用药安全性和有效性。

2.5. 高原环境中TDM药代参数的改变

高原环境对器官血流量及药物血浆蛋白结合率、代谢酶、转运体的活性及蛋白表达均有一定的影响，这些将导致高原环境下药动学参数发生变化，而药动学参数是临床用药剂量及间隔的重要依据。如大鼠灌胃给予氨茶碱剂量为3.6 mg/200 g，高原组氨茶碱体内消除减慢、T_max显著减小(高原组0.44±0.191；平原组0.887±0.196)，药物半衰期和滞留时间延长(高原组2.944±0.694；平原组2.365±0.448)，C_max增大到1.22倍，AUC增到1.35倍^[20]。这些表明氨茶碱在高原低氧环境中生物利用度升高，那么人体中其用药剂量应适当的降低，防止体内浓度过高。若明确高原环境下TDM药物的药代参数，用药的剂量也会有所明确，以确保TDM药物的疗效。

3. 总结与展望

高原低氧环境中不仅使器官的血流量发生改变，而且严重影响TDM血浆蛋白结合率、代谢酶和药物转运体，使监测血药浓度值存在误差；药动学参数也会发生改变，而药代参数的改变会导致TDM剂量受到影响。目前，TDM的监测及代谢研究多在低海拔地区进行，而高原低氧环境下TDM的代谢鲜有文献报道。高原人群TDM的用药剂量及间隔是否可以沿用平原用药标准?因此，高原环境下TDM药物代谢是一个亟待解决的问题，更是临床有效性和安全性用药的重要前提。解决这问题将为高原临床治疗监测药物提供参考，在保证高原人群合理用药、减少毒副反应发生、提高生活质量等方面具有重大意义。

参考文献 (29)

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高原环境影响治疗监测药物代谢的研究进展

doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.201912096

作者简介: 高子昭，硕士生，研究方向：高原低氧药动学，Email：841637186@qq.com

通讯作者: 王 荣，博士，教授，博士生导师，研究方向：药物分析与药物代谢，Email：wangrong-69@163.com

Advances in research on the impact of the plateau environmental on the drug metabolism

1. 材料

1.1 试剂与药品

1.2 主要仪器及设备

1.3 细胞培养

2. 方法与结果

2.1 DPPH法评价生脉注射液质量

2.1.1 实验过程

2.1.2 方法学考察

2.1.3 生脉注射液抗氧化生物活性的质量评价

2.2 Griess试剂盒评价生脉注射液的抗炎活性

2.2.1 Griess试剂盒测定生脉注射液抑制NO释放能力

2.2.2 方法学考察

2.2.3 生脉注射液抗炎生物活性的质量评价

3. 讨论

3.1 实验方法及阳性对照药的选择

3.2 结果分析

4. 展望

期刊类型引用(4)

其他类型引用(3)

计量

出版历程

高原环境影响治疗监测药物代谢的研究进展

doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.201912096

1. 宁夏医科大学药学院，宁夏 银川 730000 2. 中国人民解放军联勤保障部队第九四〇医院全军高原医学实验室，甘肃 兰州 730050

作者简介: 高子昭，硕士生，研究方向：高原低氧药动学，Email：841637186@qq.com

通讯作者: 王 荣，博士，教授，博士生导师，研究方向：药物分析与药物代谢，Email：wangrong-69@163.com

English Abstract

Advances in research on the impact of the plateau environmental on the drug metabolism

1. College of Pharmacy, Ningxia Medical University, Yinchuan 730000, China 2. The PLA Plateau Medical Laboratory of No. 940 Hospital of Joint Logistic Support Force, Lanzhou 730050, China

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2.1. 高原环境对TDM血浆蛋白结合率的影响

2.2. 高原环境对局部器官血流量的影响

2.3. 高原环境对TDM代谢酶的影响

2.4. 高原环境对TDM转运体的影响

2.5. 高原环境中TDM药代参数的改变

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全文HTML

2.1. 高原环境对TDM血浆蛋白结合率的影响

2.2. 高原环境对局部器官血流量的影响

2.3. 高原环境对TDM代谢酶的影响

2.4. 高原环境对TDM转运体的影响

2.5. 高原环境中TDM药代参数的改变

作者简介:
高子昭，硕士生，研究方向：高原低氧药动学，Email：841637186@qq.com

通讯作者: 王　荣，博士，教授，博士生导师，研究方向：药物分析与药物代谢，Email：wangrong-69@163.com

1. 宁夏医科大学药学院，宁夏银川 730000

2. 中国人民解放军联勤保障部队第九四〇医院全军高原医学实验室，甘肃兰州 730050

作者简介:
高子昭，硕士生，研究方向：高原低氧药动学，Email：841637186@qq.com

通讯作者: 王　荣，博士，教授，博士生导师，研究方向：药物分析与药物代谢，Email：wangrong-69@163.com

1. College of Pharmacy, Ningxia Medical University, Yinchuan 730000, China

2. The PLA Plateau Medical Laboratory of No. 940 Hospital of Joint Logistic Support Force, Lanzhou 730050, China