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顺式阿曲库铵（cisatracurium, CA）是一种新型中时效非去极化肌松药，其结构式如图1，因其代谢方式（Hofmann elimination，霍夫曼降解）独特，同时释放较低水平的组胺，在临床麻醉过程中被广泛应用。因与其他非去极化肌松药一样，存在术后肌松残留作用[1]，且已成为麻醉后呼吸系统不良事件的主要原因。因此，为保证患者围术期安全，对顺式阿曲库铵进行血药浓度监测十分必要。
图 1 顺式阿曲库铵的结构式
CA的稳定性主要受温度和pH影响，温度和pH升高可加快其消除，因此离体后的生物样本稳定性是血药浓度监测方法建立的一个难点。国内外文献报道测定人血浆中CA浓度的方法主要为高效液相色谱荧光检测法（HPLC-FD）及高效液相色谱串联质谱法（LC-MS）[2-6]，但样本前处理方法较为复杂。本研究在既往文献报道的基础上，建立了一种更加简便、准确、快速、稳定的LC-MS方法，适用于人血浆中CA的血药浓度测定。
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高效液相色谱仪（Agilent 6410，美国Agilent公司）；Triple Quad三重四极杆质谱仪，配电喷雾（ESI）离子源（美国Agilent公司）；纯水机（Millipore）；分析天平（BP211D，德国Sartorius公司）。对照品顺式阿曲库铵（cisatracurium，CA，批号：C496700，纯度90%，Toronto Reasearch Chemicals Inc公司）；对照品盐酸普罗帕酮（propafenone hydrochloride，PPF，批号：101190-201101，纯度99.9%，中国药品食品检定研究院）；乙腈、甲酸均为质谱纯（美国TEDIA公司）；水为自制超纯水。
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Agilent SB-C18色谱柱（2.1 mm×50 mm, 3 µm），柱温35 ℃；流动相A为0.1%甲酸水溶液，B为0.1%甲酸乙腈溶液。线性梯度洗脱：0 ~1 min, 20% B；1~3 min，50% B；3 ~5 min，20% B; 5 ~10 min，20% B。流速0.3 ml/min；进样量2 µl。
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采用正离子工作模式；离子源为ESI源；多反应监测（multiple reaction monitoring, MRM）。毛细管电压4 000 V；干燥器温度350 ℃；干燥气流速12 L/min；雾化器压力35 psi。MRM监测离子对，离子驻留时间、碰撞诱导解离电压及碰撞能量等参数见表1。典型质谱图见图2。
表 1 质谱条件
成分 母离子 子离子 驻留时间（t/ms） 碰撞电压(U/V) 电子倍增电压( U/V) 碰撞能量(U/V) CA 464.4 358.4 20 110 200 20 PPF 342.2 166.2 200 130 200 17 
图 2 HPLC-MS色谱图
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CA标准储备液：精密称取CA 10 mg置10 ml容量瓶，加入2%甲酸甲醇溶液至刻度，溶解混匀，配制成相当于CA质量浓度为1 mg/ml的储备液，于冰箱（4 ℃）备用。
CA标准工作液：精密吸取CA储备液适量，用50%甲醇水溶液配制成系列浓度的工作溶液，其中，CA质量浓度分别为5 000、2 500、1 000、500、250、100、20 ng/ml。
PPF标准储备液：精密称取PPF 0.4 mg置2 ml容量瓶，加甲醇至刻度，溶解混匀，配制成相当于PPF质量浓度为0.2 mg/ml的储备液，于冰箱（4 ℃）备用。
PPF标准工作液：精密吸取PPF储备液适量，配制成200 ng/ml的含内标乙腈溶液。
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精密吸取血浆30 μl，加入2%甲酸水溶液30 μl，振摇10 s，再加50 μl含内标乙腈溶液后旋涡振荡10 s，12 000 r/ min离心10 min，转移上清液置进样瓶，进样。
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取空白人血浆，精密加入不同浓度的对照品溶液，配制成CA浓度为500、250、100、50、25、10、2 ng/ml的血浆标准品。以浓度为X轴，样品峰与内标峰的比值为Y轴，进行线性回归，经“1/X”权重得回归方程分别为：Y = 7.43×10–3 + 1.99 × 10–2X (r = 0.996 5)。结果表明，CA在2~500 ng/ml内，线性关系良好。本方法CA的定量下限为2 ng/ml。
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配制CA浓度分别为8、80、400 ng/ml的血浆样品，日内误差以3个浓度各5个样品的测定结果表示；日间误差以3个浓度样品分别3个批次结果表示。人空白血浆分别加入不同浓度CA工作溶液，按照“2.3”项下方法提取后，相同色谱条件进行浓度测定。同时测定用流动相稀释为相应浓度的无基质溶液的峰面积，以计算绝对回收率。结果如表2所示。
表 2 CA人血浆样品的系统精密度与准确度（回收率）
CA理论浓度（ng/ml） 日内 日间 测得浓度（ng/ml） 精密度RSD（%） 准确度REC（%） 测得浓度（ng/ml） 精密度RSD（%） 准确度REC（%） 8 8.53 2.39 106.67 8.52 2.00 106.46 80 89.54 1.77 111.93 88.16 3.48 110.19 400 390.53 15.9 97.63 398.59 5.19 99.65 -
空白血浆分别配制成8、80、400 ng/ml的样品，每批次各3个，分别考察其①室温下放置4 h；②处理后室温放置24 h；③-80 ℃放置14 d的稳定性。结果如表3所示。
表 3 CA人血浆样品不同条件下的稳定性
时间 样品浓度（ng/ml） REC（%） RSD（%） 室温4 h 低 103.50 9.28 中 98.27 5.26 高 101.33 3.73 处理后室温24 h 低 77.22 5.37 中 112.95 10.83 高 110.46 6.80 –80 ℃ 14 d 低 75.40 7.95 中 113.67 23.61 高 98.22 1.69 -
取6个不同来源的人空白血浆30 μl，除不加内标外，其余按“2.3”项下操作，取上清液，分别制备成CA浓度为31.25和1 000 ng/ml；PPF浓度为200 ng/ml的溶液，进样测定，记录峰面积。另用流动相将CA稀释成31.25和1 000 ng/ml；PPF浓度为200 ng/ml浓度的溶液，进样测定，记录峰面积。
基质效应=（空白基质中添加工作溶液峰面积/重组溶液中添加工作溶液峰面积）×100%
CA的基质效应为52%（RSD 2.09%~15.33%）。PPF的基质效应为96.71%（RSD4.6%）。
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采用肌松仪监测患者注射苯磺顺式阿曲库铵后神经肌肉阻滞程度。给予4个成串刺激（train of four stimulation，TOF），给药后，T4最先发生衰减，T1最后衰减。当T1消失即仪器显示为0时，肌肉阻滞程度最大，随后逐渐恢复。分别在T0（T1消失至0）、TOFr 50（恢复至50%）、TOFr 90（恢复至90%）时采集输液对侧动脉血3 ml，并及时保存于4 ℃冰箱中。采用建立的方法测定样本血药浓度，结果见表4。同时记录T0（给药结束到T1消失至0）、TOFr50（给药结束到恢复至50%）、TOFr90（给药结束到恢复至90%）发生所需时间，结果见表5、表6。
表 4 6例受试者血浆中CA血药浓度测定结果
TOF (%) 浓度（ng/ml） 受试者1 受试者2 受试者3 受试者4 受试者5 受试者6 0 445.02 525.30 253.83 165.29 150.57 309.22 50 76.58 125.65 68.71 68.99 53.18 58.46 90 44.10 71.80 60.72 71.74 41.12 45.07 表 5 6例受试者临床资料
基本信息 受试者1 受试者2 受试者3 受试者4 受试者5 受试者6 性别 女 女 女 男 女 男 年龄（岁） 50 49 53 70 36 40 体重（m/kg） 70 75 60 50 53 80 身高（l/cm） 165 165 164 161 165 173 表 6 6例受试者达到各TOF值的时间
TOF（%） 时间（t/min） 0 10 15 15 20 20 20 50 70 70 65 65 65 75 90 105 95 95 100 85 110 -
CA的代谢途径主要为Hoffman消除[7]，Hoffman消除受温度和pH值的影响。有研究显示[8]，将苯磺顺阿曲库铵注射液稀释于20%的甲醇中，室温下，10~15 min即可检测到大量降解产物N-甲基四氢罂粟碱和单季丙烯酸酯。血浆的pH值在7.4左右。我们发现，在CA血浆样本前处理过程中，如果不加入酸调节pH值，即使在-80 ℃的储存条件下，CA仍然会很快降解（结果未在文中体现）。为此，我们考察了不同比例的甲酸，最终确定了在样本前处理过程中加入2%的甲酸能够保证血浆中CA的稳定性。在既往报道中，多是加入一定浓度的硫酸来调控pH值[2-6]。硫酸为有机酸，对测定仪器尤其是质谱仪的离子源损害很大。同时，加入硫酸并不能保证室温条件下样本的长时间稳定（<4 h）[9]。本研究结果显示，加入2%的甲酸，室温下样本稳定性可保持在24 h以上。此外，我们的样本前处理过程并不需要经过离心-上清液真空浓缩或氮吹浓缩-复溶-离心取上清液等[2-6, 9]复杂过程，更为省时、省力。经验证，本研究建立的方法测定CA血浆样本的精密度、准确度和稳定性均符合方法学要求。该方法更加简便、准确、快速、稳定，可应用于临床CA治疗药物浓度的监测。
Cisatracurium assay in human plasma by LC-MS
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摘要:
目的 建立高效液相色谱串联质谱方法（ LC-MS ）测定人血浆中顺式阿曲库铵的浓度，并应用于 临床治疗药物监测。 方法 采用盐酸普罗帕酮同位素内标，样品经2%甲酸水和含内标的乙腈溶液沉淀蛋白处理。HPLC色谱柱为Agilent SB-C18，柱温35 ℃，流速0.3 ml/min，流动相为0.1%甲酸水和0.1%甲酸乙腈溶液，梯度洗脱。质谱检测方式为ESI正离子模式，MRM扫描，监测阿曲库铵m/z 464.6~358.4，盐酸普罗帕酮（内标）m/z 342.2~116.2。 结果 人血浆中顺式阿曲库铵在该条件下分离良好，在2~500 ng/ml浓度范围内线性关系良好（r=0.996 5），定量下限为2 ng/ml。方法日内精密度RSD<16.0%；日间精密度RSD<6.0%。平均回收率为97.63%~111.93%；血浆样品室温放置4 h，-80 ℃放置14 d，处理后室温放置24 h，稳定性良好。 结论 本方法简便、准确、快速、稳定，适用于顺式阿曲库铵的血药浓度测定。 -
关键词:
- 顺式阿曲库铵 /
- 高效液相色谱串联质谱 /
- 人血浆 /
- 治疗药物监测
Abstract:Objective To establish a LC-MS method of cisatracurium assay in human plasma for clinical therapeutic drug monitoring. Method Propafenone Hydrochloride was used as the internal standard. The plasma samples were treated with 2% formic acid aqueous solution and acetonitrile containing the internal standard to precipitate protein. Agilent SB-C18 column was used for gradient elution with the mobile phase of 0.1% formic acid-water and 0.1% formic acid-acetonitrile solution at 35 ℃ and 0.3 ml/min flow rate. The degradation products of cisatracurium m/z 464.6-358.4 and propafenone hydrochloride m/z 342.2-116.2 were identified by ESI positive-ion detection. Results There was a linear rage of cisatracurium in 2-500 ng/ml (r=0.996 5) with a detection limit of 2 ng/ml. The intra-day coefficients of variation (CVs) were less than 16.00%, and the inter-day CVs were less than 6.00%. The mean recoveries were in the range of 97.63%-111.93%. The plasma samples were stable for 4 hours at room temperature, 14 days at -80 ℃ and 24 hours after pretreated. Conclusion This method was simple, accurate, fast and repeatable for the cisatracurium assay in human plasma. -
Key words:
- cisatracurium /
- LC-MS /
- human plasma /
- therapeutic drug monitoring
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生脉注射液临床上常用于辅助治疗心肌梗塞、心源性休克、脓毒症和感染性休克。心肌梗塞引起组织产生大量氧自由基，直接损伤心肌细胞并触发细胞凋亡，免疫介导的炎症损伤会加大心梗范围和心梗损伤[1]。心源性休克激活的炎症反应可诱导产生大量NO，促进细胞凋亡[2]。脓毒血症是由细菌引起的全身性炎症，大量致炎因子破坏机体的免疫平衡，从而导致机体代谢紊乱[3]，严重者可能引起感染性休克。本研究特选择抗氧化及抗炎能力作为生物效应指标，考察生脉注射液质量与生物效应之间的相关性。
课题组前期对生脉注射液中11种成分[4]进行了指认并进行了定量，均符合药典标准。药理学实验表明，生脉注射液中人参皂苷、木质素和麦冬皂苷等多种化学成分均在细胞及动物模型上表现出良好的抗炎效果[5-8]，且临床研究表明其可以通过抗炎通路发挥对器官损伤的保护作用[9-10]。现今生物效应评价在中药材和中成药质量控制研究中有所应用[11-12]，2015版《中国药典》收录了生物活性测定法作为质量控制标准，如洋地黄生物测定法和黄体生成素生物测定法，说明通过生物效应控制药品质量是可行的。
抗炎和抗氧化损伤是生脉注射液产生药理作用的重要机制，但现今的质量标准仅对化学成分进行定性定量分析，不能全面体现其整体的药效活性，为此，本研究尝试通过评价其抗氧化能力以及抗炎活性，建立有效的生脉注射液生物学质量控制方法。
1. 材料
1.1 试剂与药品
二苯基苦基苯肼（DPPH，质量分数≥97%，含10%～20%苯，批号：PRPDE-JO，梯希爱（上海）化成工业发展有限公司）；水溶性维生素E (Trolox)、DMEM培养基和磷酸盐缓冲液(PBS)均购自北京Solarbio公司；胎牛血清（FBS，德国PAN Seratech公司）；N-硝基-L-精氨酸甲酯（L-NAME）、NO检测试剂盒（上海碧云天生物技术有限公司）；无水乙醇（北京化工厂）；水（屈臣氏）。
9批次生脉注射液分别由5个不同厂家生产，样品详细情况见表1。
表 1 生脉注射液样品来源、批号及有效成分含量(μg/ml)[4]编号 生产厂家 批号 规格 人参皂苷Rb1 人参皂苷Re 人参皂苷Rg1 五味子醇甲 麦冬皂苷D S1 A 16120401005 10 ml/支 61.16 51.39 84.69 51.43 1.48 S2 B 160502 10 ml/支 101.69 55.61 88.99 73.09 3.42 S3 C 17071014 10 ml/支 56.99 44.87 80.42 36.78 1.68 S4 C 17040423 20 ml/支 63.12 44.51 81.54 39.63 1.28 S5 D 1704252 20 ml/支 77.15 62.10 86.11 29.05 3.62 S6 E 17091302 10 ml/支 85.52 57.74 88.45 33.55 1.40 S7 E 17092903 10 ml/支 80.43 41.52 86.36 37.30 1.33 S8 E 17061103 20 ml/支 74.88 61.06 80.00 35.18 1.72 S9 E 17053005 20 ml/支 79.97 48.54 80.34 44.83 1.59 1.2 主要仪器及设备
电子分析天平（AB265-S，梅托勒-托利多有限公司）；超声波清洗仪（B25-12DT，宁波新芝生物科技股份有限公司）；TS-2000A脱色摇床（海门市其林贝尔仪器制造有限公司）；96孔板、多功能连续波长酶标仪（InfiniteM1000，TECAN公司）；低速离心机（SC-3610，安徽中科中佳科学仪器有限公司）；二氧化碳培养箱（MCO-15AC，三洋电机株式会社）。
1.3 细胞培养
RAW264.7细胞为小鼠单核巨噬细胞，购于中国医学科学院基础医学研究所细胞中心。培养条件：完全培养基为含10%FBS的DMEM培养基，在37℃含5% CO2的培养箱中培养。每天换液，细胞生长达对数生长期时，传代（传代比例为1:6）并开展实验，实验用细胞控制在10代以内。
2. 方法与结果
2.1 DPPH法评价生脉注射液质量
2.1.1 实验过程
取96孔板，每孔依次加入100 μl初浓度2.0%的受试液、100 μl 0.5 mmol/L DPPH溶液，震荡均匀后避光反应20 min。
测定方法：每孔依次加入100 μl受试液和DPPH溶液，在摇床上振荡均匀，避光反应20 min后，用酶标仪测定波长在517 nm处的吸光度。
2.1.2 方法学考察
考察内容：①线性关系：分别吸取样品编号为S9的药液，用纯水定容得到浓度为8%的生脉注射液受试液。逐级稀释，测定其吸光度并计算该浓度下的平均吸光度。以终浓度为横坐标（X），平均吸光度为纵坐标（Y），绘制标准曲线，得到的线性关系方程为Y=-0.2081X+1.2209（r=0.9996）（图1-A），表明生脉注射液具有较强的DPPH自由基清除能力且具有浓度依赖性，体积浓度和平均吸光度具有良好的线性关系，在0%~2.0%范围内线性关系良好。②精密度：取样品S9，配制得到浓度2.0%的受试液，设置平行复孔，按照“2.1.1”项下操作测定吸光度，计算其吸光度的RSD值为2.25%（见表2），表明该方法满足方法学精密度要求。③重复性：取样品S9，配制得到浓度2.0%的受试液，设置平行复孔，按照"2.1.1“项下操作测定吸光度，计算其平均吸光度的RSD值为2.21%（见表2），表明该方法满足方法学重复性要求。④稳定性：取样品S9，分别于0、4、8、24、48和72 h，配制得到浓度2.0%的受试液，设置平行复孔，按照“2.1.1”项下操作测定吸光度，计算其平均吸光度的RSD值为2.47%（见表3），表明该方法在72 h内稳定性良好。
图 1 生脉注射液抗氧化生物活性评价A. 生脉注射液对DPPH清除作用的标准曲线；B. Trolox对DPPH清除作用的标准曲线；C. 1.0%各批次生脉注射液相当于Trolox的量（mmol/L）表 2 1.0%生脉注射液对DPPH清除作用的精密度和重复性考察编号 精密度试验 重复性试验 吸光度 均值 RSD(%) 吸光度 均值 RSD(%) 1 1.063 4 1.087 9 2.25 1.138 9 1.135 6 2.22 2 1.115 6 1.175 6 3 1.098 3 1.135 7 4 1.114 3 1.096 7 5 1.064 9 1.129 2 6 1.070 9 1.137 7 表 3 1.0%生脉注射液对DPPH的清除作用的稳定性时间 吸光度 均值 RSD(%) 0 1.038 5 1.078 8 2.47 4 1.105 7 8 1.072 2 24 1.080 5 48 1.065 7 72 1.110 0 2.1.3 生脉注射液抗氧化生物活性的质量评价
精密称定Trolox，加入100 μl无水乙醇溶解，纯水定容，得到初浓度为15.46 mmol/L的Trolox溶液。将其逐级稀释，按照“2.1.1“项下操作测定并计算平均吸光度，以终浓度为横坐标（X），平均吸光度为纵坐标（Y），绘制标准曲线。得到的线性关系方程为Y=–0.0789X+1.1674（r=0.9951）（见图1-B），表明Trolox清除DPPH能力在作用浓度0.43~5.56 mmol/L范围内具有良好线性关系。
将9批次生脉注射液清除DPPH自由基的结果与Trolox比较，折算得到各批次生脉注射液相当于水溶性Trolox的作用浓度（见图1-C）。结果表明，终浓度1.0%的各批次生脉注射液清除自由基能力相对于Trolox作用浓度范围为1.2~1.9 mmol/L，在清除自由基即抗氧化能力方各批次不存在较大差异。
2.2 Griess试剂盒评价生脉注射液的抗炎活性
2.2.1 Griess试剂盒测定生脉注射液抑制NO释放能力
使用完全培养基配制为1.2%的生脉注射液样品溶液，及初浓度100μg/ml的LPS样品溶液。
取对数生长期的RAW264.7细胞，制备成2×106个/ml的细胞悬液，以每孔100 μl注入96孔板。培养24 h后，弃去培养基，每孔加入100 μl样品溶液和100 μl的LPS溶液，孵育24 h后吸取50 μl上清液，按照Griess试剂盒说明书操作，用酶标仪测定波长540 nm处的吸光度。
2.2.2 方法学考察
考察内容：①线性关系：精密吸取样品编号为S6的药液，用完全培养基制成浓度为4.0%的溶液。逐级稀释，测定吸光度并计算该浓度下的平均吸光度。以终浓度为横坐标（X），平均吸光度为纵坐标（Y），绘制标准曲线。得到线性方程为Y=–0.033ln(X)+0.243（r=0.9961）（见图2-A），表明生脉注射液具有良好的NO分泌抑制能力并具有浓度依赖性，终浓度和平均吸光度之间具有良好的线性关系，在0.2%~2.0%范围内线性关系良好。②精密度：取样品S6，配制得到浓度为1.2%的受试液，设置平行复孔，按照“2.1.1“项下操作测定吸光度，计算其吸光度的RSD值为1.71%（见表4），表明该法满足方法学精密度要求。③重复性：取样品S6，配制得到浓度为1.2%的受试液，设置平行复孔，按照“2.1.1“项下操作测定吸光度，计算其平均吸光度的RSD值为2.79%（见表4），表明该法满足方法学重复性要求。④稳定性：取样品S6，分别于0、4、8、24和48 h时，配制得到浓度1.2%的溶液，设置平行复孔，按照“2.1.1”项下操作测定吸光度，计算其平均吸光度的RSD值为2.66%（见表5），表明该方法在48 h内稳定性良好。
图 2 生脉注射液抗炎活性评价A. 生脉注射液对RAW264.7细胞分泌NO的标准曲线；B. L-NAME对RAW 264.7细胞分泌NO的标准曲线；C. 0.60%各批次生脉注射液相当于L-NAME的量（mmol/L）表 4 1.2%生脉注射液对LPS刺激264.7细胞分泌NO的精密度和重复性考察编号 精密度试验 重复性试验 吸光度 均值 RSD(%) 吸光度 均值 RSD(%) 1 0.276 0 0.272 9 1.71 0.272 9 0.285 0 2.79 2 0.272 3 0.281 1 3 0.265 0 0.289 0 4 0.276 1 0.291 6 5 0.275 0 0.290 6 表 5 1.2%生脉注射液对LPS刺激264.7细胞分泌NO的稳定性考察时间 吸光度 均值 RSD(%) 0 0.264 5 0.262 3 2.66 2 0.273 6 4 0.257 4 24 0.257 4 48 0.258 6 2.2.3 生脉注射液抗炎生物活性的质量评价
精密称定eNOS抑制剂L-NAME，逐级稀释，按照“2.1.1“项下操作，测定并计算平均吸光度，以终浓度为横坐标（X），平均吸光度为纵坐标（Y），绘制标准曲线。得到线性关系方程为Y=–0.052ln(X)+0.152（r=0.9957）（见图2-B），表明L-NAME抑制NO分泌能力在0.05~0.55 mmol/L范围内具有良好线性关系。
将9批次生脉注射液抑制NO分泌能力的结果与L-NAME比较，折算得到各批次生脉注射液相对于L-NAME的作用浓度（见图2-C）。
结果显示，除S2和S8样品外，终浓度0.6%的各批次生脉注射液对应的L-NAME浓度范围均在0.06~0.16 mmol/L范围内，表明在抑制NO分泌能力即抗炎能力方面S2和S8与其他样品存在较大差异。其中S2对应的L-NAME浓度远高于其他样品，其抗炎活性远高于其他样品组，推测这可能与化学成分含量差异有关，需要后续的实验加以证实。
3. 讨论
3.1 实验方法及阳性对照药的选择
测定抗氧化活性常用的方法有氧化自由基吸收能力（ORAC）、二苯基苦基苯肼（DPPH）法和总抗氧化能力检测（ABTS）法等，本实验首先采用DPPH法测定抗氧化能力，该方法操作简便，常用于体外评价化合物的抗氧化活性，其中Trolox和维生素C是常用的抗氧化剂对照药[13-14]，但相较之下，Trolox可通过清除自由基产生抗氧化机制，且具有剂量依赖性[15]，而维生素C稳定性较Trolox差，所以该方法选择了该药作为阳性对照。内皮型一氧化氮合酶（eNOS）诱导产生NO是NO产生的重要途径[16]，L-NAME作为eNOS抑制剂，选择其作为对照药可以更加直观地评价药物对细胞产生NO的抑制能力。
3.2 结果分析
参考2015版药典生物测定方法，该试验通过测定生脉注射液的抗炎和抗氧化能力，初步建立了生脉注射液的生物效应质量控制方法，该方法不仅能满足方法学要求，而且可以克服现行质量控制方法的局限性，还可以有效的评价中药复方制剂在治疗过程中产生的效应强度，实现“质-量-效”的有效结合[17]。
4. 展望
中药复方是一个组分复杂，不仅化学成分复杂，未知组分众多，而且其可能通过不同成分的配伍产生作用机制，即其药理机制不是单一化学成分能够阐明的，因此，仅对中药复方的化学成分进行评价难以对其成分及作用进行全面阐述。生物效应质量控制方法能对中药复方的整体组分药效进行把控，从药理活性方面评价中药复方质量，弥补现有质控方法的不足。在生物效应质控方法建立过程中，应注意以下问题：①质控方法应根据药效及药理机制研究选择合适的生物效应指标，充分反映该药的药理活性特征；②选择的对照药应具有足够的专属性、关联性和可测性，能够充分准确地反映药物的生物效应[18-20]。参考已有的生物质量控制研究[11，21]并对生脉注射液可能的药理活性进行筛选，对此进行考察。重点考察其方法学验证，结果显示该方法可行性高，方法学符合生物效应评价要求，可以反映生脉注射液的整体生物效应。但抗炎活性的测定实验要求较高的实验操作，且该方法对中药复方的整体生物活性进行测定，并未对可能产生药理活性的化学组分和含量进行探究和测定，可能产生药理活性的化学成分及作用机制尚不明确，值得后续的探讨。
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表 1 质谱条件
成分 母离子 子离子 驻留时间（t/ms） 碰撞电压(U/V) 电子倍增电压( U/V) 碰撞能量(U/V) CA 464.4 358.4 20 110 200 20 PPF 342.2 166.2 200 130 200 17 
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表 2 CA人血浆样品的系统精密度与准确度（回收率）
CA理论浓度（ng/ml） 日内 日间 测得浓度（ng/ml） 精密度RSD（%） 准确度REC（%） 测得浓度（ng/ml） 精密度RSD（%） 准确度REC（%） 8 8.53 2.39 106.67 8.52 2.00 106.46 80 89.54 1.77 111.93 88.16 3.48 110.19 400 390.53 15.9 97.63 398.59 5.19 99.65
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表 3 CA人血浆样品不同条件下的稳定性
时间 样品浓度（ng/ml） REC（%） RSD（%） 室温4 h 低 103.50 9.28 中 98.27 5.26 高 101.33 3.73 处理后室温24 h 低 77.22 5.37 中 112.95 10.83 高 110.46 6.80 –80 ℃ 14 d 低 75.40 7.95 中 113.67 23.61 高 98.22 1.69
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表 4 6例受试者血浆中CA血药浓度测定结果
TOF (%) 浓度（ng/ml） 受试者1 受试者2 受试者3 受试者4 受试者5 受试者6 0 445.02 525.30 253.83 165.29 150.57 309.22 50 76.58 125.65 68.71 68.99 53.18 58.46 90 44.10 71.80 60.72 71.74 41.12 45.07
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表 5 6例受试者临床资料
基本信息 受试者1 受试者2 受试者3 受试者4 受试者5 受试者6 性别 女 女 女 男 女 男 年龄（岁） 50 49 53 70 36 40 体重（m/kg） 70 75 60 50 53 80 身高（l/cm） 165 165 164 161 165 173
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