下载:
下载:
-
红色诺卡菌（Nocardia rubra，Nr）是一种放线菌，其细胞壁骨架（Nocardia rubra cell wall skeleton，Nr-CWS）具有免疫调节作用[1]。Nr-CWS作为一种治疗药物现已在国内上市并在临床使用。研究表明，Nr-CWS在增强体内巨噬细胞、T细胞和自然杀伤细胞活性的同时，还能诱导机体产生LAK细胞，提高机体内T辅助性细胞和杀伤细胞活力、增强巨噬细胞和天然杀伤细胞免疫活性，抑制肿瘤和增强免疫能力的功效[2-4]。但Nr-CWS在发挥作用的同时，往往还伴随一些副作用的发生。究其主要原因是由于红色诺卡菌细胞壁是个细胞粗提物[5]，其中的成分复杂，具体哪种成分起相应的药理作用还不清楚，这极大地影响了其临床使用及后续药理作用机制的研究。本研究拟采用UHPLC-Q-TOF/MS分析方法首先对Nr-CWS提取物中化学成分进行分离分析，鉴别其中的化学成分；并对其中的多糖成分进行水解，然后对水解后的单糖进行衍生化处理，与其他分析方法相比, UHPLC-MS/MS具有较大的优越性[6-8], 其灵敏度高、专属性强、可以快速准确地测定单糖的含量。所以本研究采用UHPLC-MS/MS方法对单糖衍生化产物进行定量分析测定，这将为后期开展Nr-CWS活性成分筛选及药理作用机制的研究奠定基础。
-
安捷伦-1290 Infinity高效液相色谱系统-电喷雾离子源（安捷伦，Palo Alto, CA, USA）串联安捷伦6538四级杆-高分辨飞行时间质谱（UHPLC-Q-TOF/MS），安捷伦-1290 Infinity高效液相色谱系统-电喷雾离子源（安捷伦，Palo Alto, CA, USA）串联安捷伦6460三重四级杆质谱（UHPLC-MS/MS），AMIDE色谱柱（3.0 mm×100 mm，3.5 µm，Waters，USA），Waters Xbridge C18色谱柱(2.1 mm×100 mm，1.7 μm)，Milli-Q50 SP纯水制备系统制备（Millipore Corporation, MA, USA），电热干燥箱（上海恒科仪器有限公司，DHG-9145AZ）。
-
Nr-CWS提取物（辽宁格瑞士特生物科技有限公司，按照产品工艺提取）；Sephadex G-100（国药集团化学试剂有限公司）；D-甘露糖、D-核糖、L-鼠李糖、D-果糖、D-葡萄糖、D-木糖、D-半乳糖、D-阿拉伯糖（纯度>98%，国药集团化学试剂有限公司）；三氟乙酸(TFA)、1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮（PMP，国药集团化学试剂有限公司）；HPLC色谱级甲醇、乙腈（默克公司，Darmstadt, Germany）；乙醇、甲酸（Fluka公司，Buchs, Switzerland）。
-
UHPLC-Q-TOF/MS分析在安捷伦1290 Infinity 液相色谱系统和安捷伦6538四极杆-高分辨飞行时间串联质谱仪(Agilent，USA)上进行，色谱分离在Amide色谱柱上进行（3.0 mm×100 mm，3.5 µm，Waters，USA），柱温40 ℃，流动相A为0.1 %甲酸水溶液，流动相B为乙腈溶液，流速0.4 ml/min，流动相采用梯度洗脱，洗脱条件为：0~1 min，5 % A；1~5 min，5 %~20 % A；5~20 min，20%~45 % A；20~30 min，45 % A，进样量为5 µl，自动进样器温度保持在25 ℃。电喷雾离子源（ESI）采用正、负离子模型。Q-TOF/MS质谱参数如下：毛细管电压，正离子模式下4 kV，负离子模式下3.5 kV；干燥器流速11 L/min；气体温度350 ℃；雾化器压力45 psig；碎片电压120 eV；Skimmer电压60 eV。质谱的采集范围m/z 50~1100，分析碰撞能量10~40 eV。
-
取Nr-CWS提取物溶于1 ml纯水中，充分涡旋溶解后制成Nr-CWS提取物母液，取100 µl于1.5 ml EP管中，加入3倍量的乙醇进行蛋白沉淀。然后4 ℃下13 000 r/min离心15 min，吸取200 µl上清液，于进样瓶中用于UHPLC-Q-TOF/MS分析。
-
采用UHPLC-Q-TOF/MS分析方法对Nr-CWS提取物样品溶液进行快速地分离与分析，获得正、负离子模式下的总离子流图，通过与Metlin数据库中代谢物信息比对分析，可对Nr-CWS提取物中化学成分进行快速分析与鉴别，结果如图1和表1所示。
图 1 Nr-CWS全成分分析UHPLC-Q-TOF/MS图谱
表 1 Nr-CWS中化学分析的UHPLC-Q-TOF/MS数据信息
序号 化合物名称 [M+X] 分子式 m/z 保留时间（t/min） 1 2-(S-glutathionyl)acetyl glutathione M-H C22H34N6O13S2 654.162 5 0.91 2 2-(S-glutathionyl)acetyl glutathione M+H C22H34N6O13S2 654.668 0 0.91 3 estradiol-17alpha 3-D-glucuronoside M-H C24H32O8 448.209 7 1.12 4 tyrosine M+H C9H11NO3 181.190 0 1.13 5 cer(d18∶0/23∶0) M+H C41H83NO3 637.637 3 1.30 6 palmitic acid M-H C16H32O2 256.424 1 1.31 7 stearic acid M-H C18H36O2 284.271 5 1.31 8 L-threonine M+H C4H9NO3 119.120 0 1.33 9 D-xylose M-H C5H10O5 150.130 0 1.34 10 N-acetyl-D-glucosamine M-H C8H15NO6 221.210 0 1.39 11 meso-2,6-diaminopimelic acid M+H C7H14N2O4 190.197 1 1.39 12 leinoleic acid M+H C18H32O2 280.445 5 1.41 13 choline M+H C5H15NO 104.170 8 1.56 14 L-rhamnose monohydrate M-H C6H12O5 164.160 0 1.64 15 docosapentaenoic acid M-H C22H34O2 330.255 9 1.67 16 proline M-H C5H9NO2 115.130 0 1.93 17 fructose 1,6-bisphosphate M+H C6H14O12P2 339.996 0 2.22 18 glucose 6-phosphate M+H C6H13O9P 260.135 8 2.28 19 fucose M-H C6H12O5 164.150 0 2.34 20 L-proline M-H C5H9NO2 115.063 3 2.34 21 PG(18∶0/20∶3(8Z,11Z,14Z)) M-H C44H81O10P 800.556 7 5.96 22 tetracosanoic acid M-H C24H48O2 368.636 7 7.07 23 orotidylic acid M-H C10H13N2O11P 368.190 8 7.65 24 sphinganine M+H C18H39NO2 301.507 8 7.72 25 valine M-H C5H11NO2 117.150 0 7.74 26 cervonoyl ethanolamide M-H C24H36O3 372.540 8 7.94 27 phytosphingosine M+H C18H39NO3 317.507 2 7.94 28 tryptophan M+H C11H12N2O2 204.230 0 7.97 29 trihexosylceramide (d18∶1/12∶0) M-H C48H89NO18 967.608 0 8.10 30 histidine M+H C6H9N3O2 155.160 0 8.45 31 L-asparagine M-H C4H8N2O3 132.120 0 9.65 32 galactinol dihydrate M-H C12H26O13 378.327 0 9.66 33 3-hydroxydodecanoyl carnitine M+H C19H37NO5 359.500 8 9.70 34 L-cysteine M+H C3H7NO2S 121.120 0 9.84 35 cysteinyl-threonine M-H C7H14N2O4S 222.067 4 9.98 36 D-mannose M-H C6H12O6 180.160 0 10.10 37 MG (0∶0/24∶1(15Z)/0∶0) M-H C27H52O4 440.386 6 10.11 38 4-(methylnitrosamino)-1-(3-pyridyl)-1-butanol glucuronide M-H C16H23N3O8 385.369 1 11.32 39 D-glucose M-H C6H12O6 180.160 0 11.34 40 desmosine M+H C24H40N5O8 526.603 1 11.38 41 L-methionine M+H C5H11O2NS 149.210 0 11.59 42 glycogen M-H C24H42O21 666.577 7 11.90 43 levan M-H C18H32O16 504.437 1 11.90 44 D-galactose M-H C6H12O6 180.160 0 11.92 45 L-beta-aspartyl-L-aspartic acid M+H C8H12N2O7 248.190 1 12.00 46 muramic acid M-H C9H17NO7 251.233 8 12.16 47 1-pyrroline-2-carboxylic acid M-H C5H7NO2 113.114 6 12.25 48 ADP-glucose M-H C16H25N5O15P2 589.341 7 12.25 49 DG(42∶10) M+H C45H68O5 688.506 7 12.27 50 isoleucine M-H C6H13NO2 131.170 0 12.55 51 leucine M-H C6H13NO2 131.170 0 12.79 52 PGP(16∶1(9Z)/18∶0) M-H C40H78O13P2 828.491 8 12.99 53 PGP(16∶0/20∶4) M+H C42H76O13P2 850.992 6 13.01 54 TG(62∶6) M-H C65H114O6 990.861 5 13.60 55 ganglioside GM3 (d18∶1/16∶0) M-H C57H104N2O21 1152.713 2 14.15 56 valyl-methionine M+H C10H20N2O3S 248.342 0 14.18 57 DG(18∶2n6/0∶0/22∶6n3) M-H C44H70O5 678.522 3 15.27 58 PS(16∶0/18∶2) M-H C40H74NO10P 759.990 0 15.90 59 PGP(18∶1/22∶6) M-H C46H78O13P2 900.491 8 16.62 60 CDP-DG(16∶0/18∶0) M-H C46H85N3O15P2 981.545 6 17.41 61 TG(22∶6(4Z,7Z,10Z,13Z,16Z,19Z)/24∶0/22∶6(4Z,7Z,10Z,13Z,16Z,19Z)) M-H C71H114O6 1 062.861 5 18.28 62 TG(24∶0/24∶0/24∶0) M-H C75H146O6 1 143.111 9 19.25 63 serine M-H C3H7NO3 105.090 0 27.23 64 alanine M-H C3H7NO2 89.090 0 27.28 -
准确称取D-甘露糖、D-核糖、L-鼠李糖、D-果糖、D-葡萄糖、D-木糖、D-半乳糖、D-阿拉伯糖各10 mg，分别置10 ml 容量瓶，各加水定容，即得1 mg/ml浓度的各单糖标准品溶液。分别精密取上述单糖标准品溶液，混合后加重蒸水稀释，制成100 μg/ml的单糖混合标准溶液。
-
精密称取1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(PMP)1.0 g，置10 ml量瓶中，加甲醇溶解并定容，摇匀，制得0.5 mol/L的PMP 甲醇溶液。
-
精密吸取单糖及混合标准品溶液100 μl置2 ml EP管中，添加100 μl氨水，再加入100 μl 0.5 mol/L的PMP甲醇溶液，涡旋30~45 s，于70 ℃烘箱中加热30 min，取出放冷至室温。加入100 μl乙酸，涡旋30 s中和，加重蒸水至1 ml，再加500 μl氯仿，涡旋30 s，混匀，弃去下层溶液，重复3 次，12 000 r/min离心10 min，水层经0.22 μm微孔滤膜滤过，取次滤液用于UHPLC-MS/MS分析，见表2。
表 2 UHPLC-MS/MS分析测定的质谱条件
序号 化合物名称 保留时间（t/min） 分子式 单糖分子量 衍生物分子量 母离子 子离子 碰撞电压（eV） 1 D-甘露糖 2.012 C6H12O6 180.1 512.1 511.1 175.0, 217.1 34 2 D-核糖 2.216 C5H10O5 150.1 482.1 481.1 175.0, 217.1 31 3 L-鼠李糖 2.423 C6H14O6 164.1 496.1 495.1 175.0, 217.1 31 4 D-果糖 2.504 C6H12O6 180.1 512.1 511.1 175.0, 217.1 34 5 D-葡萄糖 3.725 C6H12O6 180.1 512.1 511.1 175.0, 217.1 34 6 D-木糖 3.917 C5H10O5 150.1 482.1 481.1 175.0, 217.1 31 7 D-半乳糖 3.918 C6H12O6 180.1 512.1 511.1 175.0, 217.1 34 8 D-阿拉伯糖 4.086 C5H10O5 150.1 482.1 481.1 175.0, 217.1 31 -
UHPLC-MS/MS分析采用安捷伦1290 Infinity 液相色谱系统和安捷伦6460三重四极杆串联质谱仪(Agilent，USA)。色谱分离在Waters Xbridge C18色谱柱(2.1 mm×100 mm，1.7 μm)，柱温40 ℃，流动相A为20 mmol/L的乙酸铵水溶液（氨水调pH 8.0），流动相B为乙腈溶液，流速0.4 ml/min，流动相采用梯度洗脱，洗脱条件为：0~2 min，15%~20% B；2~4 min，20%~25% B；4~5 min，25%~95 % B，5~6 min，15 % B，样品分析时间5 min，柱后平衡时间1 min。进样量为2 µl，自动进样器温度保持25 ℃。三重四级杆质谱条件为：电喷雾离子源（ESI）采用负离子，多级反应选择离子监测模式：毛细管电压3.5 kV；干燥器流速11 L/min；气体温度350 ℃；雾化器压力40 psig；碎片电压80 eV；Skimmer电压60 eV。
-
精密吸取Nr-CWS提取物溶液1 ml，加入2 mol/L的TFA 2.0 ml，放入110 ℃的真空干燥箱中，酸性条件下水解6 h，冷却至室温，4 ℃条件下离心干燥，挥发三氟乙酸，加重蒸水1 ml复溶，用于衍生化处理。
-
精密吸取Nr-CWS提取物的水解液100 μl，按照前述单糖衍生化方法进行前处理后，精密吸取前处理后的样品溶液2 μl进UHPLC-MS/MS分析，混合标准品和Nr-CWS样品衍生化后的UHPLC-MS/MS色谱图见图2。
图 2 单糖衍生化物的UHPLC-MS/MS色谱图
-
精密吸取单糖混合标准品溶液，按前述单糖衍生化方法进行前处理后，精密吸取前处理后的样品溶液2 μl用UHPLC-MS/MS法分析，以各单糖峰面积与相应浓度进行线性回归分析，计算回归方程和相关系数，逐步稀释后，按照信噪比S/N=10和3，分别计算其定量限和检测限，结果见表3。
表 3 单糖衍生物的标准曲线及定量限和检测限
序号 化合物 回归方程 r 浓度范围（μg/ml） 定量限（ng/ml） 检测限（ng/ml） 1 D-甘露糖 Y = 383.2 X − 92.4 0.996 0.05~10 20 5 2 D-核糖 Y = 656.8 X − 109.5 0.994 0.10~20 50 20 3 L-鼠李糖 Y = 1025.3 X − 386.4 0.992 0.50~100 20 5 4 D-果糖 Y = 902.3 X − 133.1 0.994 0.10~20 100 50 5 D-葡萄糖 Y = 2875.3 X − 342.9 0.993 0.50~100 100 50 6 D-木糖 Y = 2391.1 X − 1004.6 0.995 0.05~10 50 20 7 D-半乳糖 Y =3482.4 X − 1093.5 0.998 1.00~200 100 50 8 D-阿拉伯糖 Y = 5436.8 X − 2102.3 0.992 5.00~1000 50 20 -
取经水解和衍生化反应后的单糖混合标准溶液，按照前述UHPLC-MS/MS分析测定条件，连续进样6次，计算其测定结果的RSD为3.13%，结果表明该方法的精密度良好，符合分析测定的要求。
-
Nr-CWS提取物溶液经水解和衍生化反应后，室温下放置，分别于0、5、l5、30、60、120 min进样，进行UHPLC-MS/MS分析，测定其浓度，对样品的稳定性进行评价，结果6次测定结果的RSD为7.63%，表明样品在2 h内稳定性良好，符合分析测定的要求。
-
取同一批样品，重复测定6次，计算其测定结果RSD为4.67%，表明该方法的重复性良好，符合分析测定的要求。
-
精密吸取已知含量的Nr-CWS提取物加入接近等量的单糖混合标准品溶液，经水解和衍生化反应后，进行UHPLC-MS/MS分析，计算其平均回收率为86.93%，RSD为9.15%，符合分析测定的要求。
-
精密吸取Nr-CWS提取物样品溶液6份，经水解衍生化后，按照前述UHPLC-MS/MS分析条件对衍生化后的样品进行分离分析，测定其中单糖的含量，结果见表4，可以看出8种单糖成分都能被检出，其中阿拉伯糖和半乳糖的含量最高。
表 4 Nr-CWS提取物（1~6）中8种单糖成分的含量测定结果
提取物编号 单糖成分(μg/ml) D-甘露糖 D-核糖 D-鼠李糖 D-果糖 D-葡萄糖 D-木糖 D-半乳糖 D-阿拉伯糖 1 0.9 5.3 12.2 18.9 55.1 20.9 320.8 456.1 2 2.1 4.6 21.4 12.4 48.3 19.2 205.6 504.8 3 3.2 3.5 30.5 9.8 61.9 23.1 223.0 327.3 4 5.5 6.6 19.8 15.4 45.8 27.8 305.4 462.8 5 1.5 4.9 23.4 14.7 39.1 12.1 311.7 489.1 6 4.7 7.6 25.1 22.5 52.7 27.2 289.2 510.8 平均值 3.0 5.4 22.1 15.6 50.5 21.7 276.0 458.5 -
Nr-CWS提取物中化学成分的分析鉴别，采用UHPLC-Q-TOF/MS分析方法对Nr-CWS提取物样品溶液进行快速地分离分析[15-16]，获得正、负离子模式下的总离子流图，通过与Metlin数据库中代谢物信息快速地比对分析，共鉴别出Nr-CWS提取物中64个化学成分，其中包含氨基酸、脂肪酸、单糖、胞壁酸、粘肽等成分，说明Nr-CWS提取物中含有很多的细胞代谢产物，且以氨基酸、脂肪酸和糖类成分为主，这些成分就是Nr-CWS提取物发挥作用的主要成分。
由于Nr-CWS提取物中成分复杂，采用UHPLC-Q-TOF/MS方法直接对提取物进行分析，仅能检测到个别单糖成分，如木糖、半乳糖、葡萄糖等，说明Nr-CWS提取物中主要含有多糖成分，经水解衍生化后[17-20]，采用UHPLC-MS/MS方法进行检测，8个单糖都能被检测到，且阿拉伯糖和半乳糖的含量最高，说明Nr-CWS中的多糖主要由阿拉伯糖和半乳糖组成，这将为进一步的多糖成分分析鉴别奠定基础。
对单糖进行分析测定的方法有很多，我们通过比较衍生化和不衍生化方法的检测限和定量限，发现单糖衍生化后，其定量限和检测限更低，测定干扰更少，分析方法学验证结果表明，其精密度、重现性、稳定性和回收率均符合分析测定的要求。
-
本研究采用UHPLC-Q-TOF/MS方法对Nr-CWS提取物中化学成分进行了快速地分离与分析，通过与Metlin代谢物成分数据库比对，共鉴别出Nr-CWS提取物中64个化学成分，主要包括氨基酸、糖类、脂肪酸等成分；对Nr-CWS提取物中糖类成分衍生化后，采用UHPLC-MS/MS分析方法对Nr-CWS提取物中8种单糖成分进行含量测定。结果表明，Nr-CWS中阿拉伯糖的含量最高，其次为半乳糖，说明Nr-CWS中发挥作用的主要多糖类成分可能主要由这几种单糖组成。通过本研究为后期开展Nr-CWS活性成分筛选及药理作用机制的研究奠定了基础。
Identification of chemical components and monosaccharide assay in Nocardia rubra cell wall skeleton
-
摘要:
目的 分析鉴别红色诺卡菌细胞壁骨架（Nr-CWS）中的化学成分，并对其中的单糖成分进行分析测定。 方法 首先，采用UHPLC-Q-TOF/MS方法对Nr-CWS提取物中的化学成分进行分离与分析，通过与Metlin数据库中代谢物成分信息比对，快速鉴别其中化学成分。然后，对Nr-CWS提取物中多糖水解后衍生化，采用UHPLC-MS/MS法对单糖衍生物进行定量分析，测定单糖的含量。 结果 共鉴别出Nr-CWS提取物中的64个化学成分，主要包括氨基酸、单糖、脂肪酸等成分。此外，建立了8种单糖柱前衍生化的UHPLC-MS/MS含量测定方法，含量测定结果表明，Nr-CWS中阿拉伯糖和半乳糖的含量最高，说明阿拉伯糖、半乳糖是组成Nr-CWS中多糖的主要组成成分。 结论 通过对Nr-CWS中的主要化学成分进行了分离与分析，对多糖水解后的单糖成分进行含量测定，为今后开展Nr-CWS活性成分的筛选及药理作用机制的研究奠定基础。 -
关键词:
- 红色诺卡菌细胞壁骨架 /
- 化学成分 /
- 鉴别 /
- 单糖 /
- 含量测定
Abstract:Objective To analyze and identify the chemical components in the Nocardia rubra cell wall skeleton (Nr-CWS), and to determine the contents of monosaccharides accurately. Methods The extract of Nr-CWS was separated and analyzed by UHPLC-Q-TOF/MS method. The chemical components were quickly identified by matching the data with the information in the Metlin database. The monosaccharide contents in the Nr-CWS extract were determined by UHPLC-MS/MS method after derivatization. Results A total of 64 chemical components were identified in the extract of Nr-CWS, including amino acids, monosaccharides and so on. A assay method for 8 monosaccharides by UHPLC-MS/MS was successfully established. The content of arabinose in Nr-CWS was the highest, followed by galactose, which indicated that the main polysaccharide components in Nr-CWS may be composed of these monosaccharides. Conclusion In this study, we analyzed the main chemical components of Nr-CWS, which are amino acids, fatty acids and so on. The content of monosaccharide after polysaccharide hydrolysis was determined by UHPLC-MS/MS. This will lay a foundation for the screening of the active components of Nr-CWS and the study of its pharmacological mechanism. -
Key words:
- Nocardia rubra cell wall skeleton /
- chemical component /
- identification /
- monosaccharide /
- determination
-
糜烂型口腔扁平苔藓（OLP）为自身免疫性口腔黏膜病 [1-2]，它在临床上具有病情容易反复的特点，其中，糜烂型的反复发生糜烂、溃疡，同时潜在恶化可能，恶变率为0%~5.3%[3]，对人体危害最大，患者常伴有疼痛不适，尤其是进食辛辣、热烫、质硬等刺激性食物的时候，有烧灼等不适感。由于致病原因不清，时下对于这一疾病尚无根治办法[2,4]，大多围绕缓解痛感和促使恢复、预防癌变为主。临床上常用如糖皮质激素软膏涂抹或者局部封闭的方法，严重的全身免疫调节治疗，常用的有肾上腺皮质激素口服治疗，但是临床上的治疗也只能缓解症状，尽管取得了一定的疗效，但长期使用激素有明显副作用。近年来，中医中药疗法受到医疗工作者的关注，笔者观察了徐州市中心医院2018−2020年糜烂型OLP患者，采用口服免疫调节剂白芍总苷胶囊联合复方黄柏液局部含漱治疗，获得了较好的效果，具体报道如下。
1. 对象与方法
1.1 研究对象
此次探究围绕2018年1月至2020年12月在本院口腔科收治的糜烂型OLP病患为中心，总计62位病患，男性21例、女性41例，年纪为39～75岁。此次治疗时间以30 d为准。采用平行、随机对照的方式，把全部的病患等分为对照组以及观察组，对各组的病患年龄、性别等一般信息予以对比，差异无统计学意义（P>0.05），见表1。此次研究患者知情同意，并得到了院内医学伦理委员会的许可。
表 1 两组患者基本资料比较($\bar x $ ±s，n=31)患者 观察组 对照组 性别（男/女） 10/21 11/20 中位年龄（岁） 55 53 平均病程（月） 23.65±8.72 22.83±7.91 纳入原则：①确诊是糜烂型；②没有严重的全身性疾病，不存在认知以及精神问题；③治疗前14 d没有开展系统性的干预，没有参与其他临床试验；④没有同期其他用药；⑤病患了解以及认同参与此次研究。
排除原则：①存在明确的其他口腔黏膜疾病；②妊娠或哺乳期；③精神类疾病；④有系统性疾病、恶性肿瘤、严重免疫性疾病；⑤该类药物既往过敏史；⑥无法配合医嘱服药以及按时复查，试验数据不完善者。
1.2 治疗方法
各组病患都给予白芍总苷胶囊(宁波立华制药有限公司，国药准字H20055058，规格：0.3 g/粒)口服，每次0.6 g，每日3次。观察组辅用复方黄柏液（山东汉方制药有限公司，国药准字Z10950097，规格：150 ml/瓶）每次10 ml，含漱5 min，每日3次，疗程30 d。
1.3 疗效评价
依据中华口腔医学会《口腔扁平苔藓疗效评价标准（试行）》[5]。
1.3.1 体征评分
评分标准为0～5分，对应的依据依次是0分：没有病损，常规黏膜；1分：少量白色条纹，不存在充血，萎缩以及溃烂情况；2分：白色条纹并存在充血以及萎缩面域不大于1 cm2；3分：白色条纹并存在充血以及萎缩面域大于1 cm2；4分：白色条纹并糜烂面域不大于1 cm2；5分：白色条纹并糜烂面域大于1 cm2。
1.3.2 疼痛程度评估
结合疼痛程度（VAS）评估，就各组的病患对于自我感觉的疼痛情况予以打分，划定为10个级别，线性的左侧为零，即不存在任何痛感；另一端则为10，即有剧烈痛感，将病患主观感知的痛感结合数字模拟方式表示出来，于线性上进行标注，得到VAS结果，0分：无疼痛（VAS 0）;1分：轻度疼痛（VAS 1～3）；2分：中度疼痛（VAS 4～6 ）；3分：重度疼痛（VAS 7～10）。
1.3.3 临床疗效评定标准
显效即VAS评分是0，同时体征评分是0、1；有效即VAS和体征评分较治疗前均降低；无效即VAS和体征评分无改变或增加。有效率：（显效例数+有效例数）/总例数。
治疗前记录上述指标，作为基线资料。
1.4 统计学处理
应用SPSS22.0开展数据分析，计量数据行t检验，以（
$\bar x$ ±s）表示，计数数据行χ2检验，P<0.05为差异有统计学意义。2. 结果
2.1 两组患者治疗前后VAS 及体征评分比较
治疗前两组患者 VAS 及体征评分组间无明显差异(P>0.05)；治疗后 30 d，观察组患者VAS评分及体征评分以及对照组VAS评分均较治疗前好转(P<0.05)，实验组 VAS评分显著优于对照组(P<0.05)，见表2。
表 2 各组病患干预前后VAS 与体征评分结果组别 例数（n） VAS评分 体征评分 治疗前 治疗后30 d 治疗前 治疗后30 d 观察组 31 3.35±0.76 1.93±0.41*# 4.35±0.53 3.67±0.35* 对照组 31 3.22±0.71 2.76±0.53* 4.29±0.46 4.05±0.38 *P<0.05，与治疗前比较；#P<0.05，与对照组比较。 2.2 两组OLP患者治疗前后临床疗效比较
由表3效果评估结果可得，观察组有效性为64.5%，显著高于对照组（41.9%），P<0.05。
表 3 两组OLP患者临床疗效比较组别 例数（n） 临床疗效评价 显效 有效 无效 有效率（%） 观察组 31 1 19 11 64.5* 对照组 31 0 13 18 41.9 *P<0.05，与对照组比较。 3. 讨论
糜烂型OLP作为一种常见的口腔黏膜病变，存在癌化可能，加之病损部疼痛，对患者饮食和说话都有影响，疾病反复、病程较长、难以根治给患者带来巨大痛苦。
对该病的治疗，除了局部和全身用药外，还可结合中医药治疗。其中，白芍总苷胶囊治疗OLP的应用最多。白芍为毛莨科植物芍药的干燥根[6]，为典型的传统中药之一，它的药用潜力较高，《本经》记载其功效丰富，在中西医方面都得到很好的普及使用。龚振东等[4]探讨了白芍总苷在OLP临床应用中的作用，结果表明白芍总苷对糜烂型OLP有良好的治疗效果。白芍总苷主要基于对细胞因子、T淋巴细胞亚群等的调控和管理完成OLP的诊治[7]。另外，白芍总苷还具有抗炎作用[8]，相关研究指出其在抗炎过程中或许和调节免疫细胞、管控细胞因子以及相关化学物质等有着一定的联系，其免疫调节以及抗炎效果也得到了业内认可，对OLP的治疗有显著作用[6]。本研究中，单纯口服白芍总苷胶囊的患者在治疗30 d后VAS评分较治疗前有所好转，但体征评分无明显改变，治疗的有效率仅为41.9%，可能与用药时间短有关，因为郑赛巍等研究[9]发现，延长白芍总苷胶囊的用药时间可显著提高OLP治疗效果，建议用药至少3个月以上。
胡爱平等[10]分析指出，单独使用白芍总苷胶囊的病患于干预之后90 d的VAS结果和体征评估结果都有显著提升，但治疗有效率仅为 53.1%，由此可见，单独使用该药效果并不理想[6,11]。复方黄柏液为局部应用的中成药，由学者谢景龙研制，为清热解毒、化瘀通络、消除疼痛的中药配方[12]。其中的黄柏、蒲公英等成分主要起消热解毒、缓通等功效，对于疮疡以及外部感染等问题有突出效用[13]。此外，对于复方黄柏液治疗疮疡和外伤感染导致的溃疡，临床测试有效性达97.7%，治愈性达84.6%[12]。宋志强[11]及其团队则分析指出，鼻咽癌病患于放疗期间选择该药剂，可以极大改善口腔黏膜炎症并能有效减小损伤，还可以明显减轻口腔疼痛。本研究中，观察组辅以局部含漱复方黄柏液 30 d后，VAS和体征评分结果对比之前都有明显改善，其中，VAS评分结果明显优于对照组，临床疗效为64.5%，也显著优于对照组。复方黄柏液已被证实[14-19]可通过改善创面炎症反应、上调相关生长因子及抑制细胞凋亡的作用，减轻局部组织损伤及促进局部微循环的建立加速创面愈合，减轻红肿疼痛。
由此可见，复方黄柏液与白芍总苷胶囊联合应用具有显著的临床疗效，可明显减轻炎症反应、促使糜烂面恢复、减轻病患痛感。且治疗过程中无创伤，患者接受度高，但其远期效果还有待进一步研究。
-
图 2 单糖衍生化物的UHPLC-MS/MS色谱图
A.8个单糖衍生化物的UHPLC-MS/MS一级质谱图；B. UHPLC-MS/MS二级质谱图(m/z 481.1→175.0, 217.1)；C. UHPLC-MS/MS二级质谱图(m/z 495.1 →175.0, 217.1)；D. UHPLC-MS/MS二级质谱图(m/z 511.1→175.0, 217.1)1. D-甘露糖；2.D-核糖；3.L-鼠李糖；4.D-果糖；5.D-葡萄糖；6.D-木糖；7.D-半乳糖；8.D-阿拉伯糖
表 1 Nr-CWS中化学分析的UHPLC-Q-TOF/MS数据信息
序号 化合物名称 [M+X] 分子式 m/z 保留时间（t/min） 1 2-(S-glutathionyl)acetyl glutathione M-H C22H34N6O13S2 654.162 5 0.91 2 2-(S-glutathionyl)acetyl glutathione M+H C22H34N6O13S2 654.668 0 0.91 3 estradiol-17alpha 3-D-glucuronoside M-H C24H32O8 448.209 7 1.12 4 tyrosine M+H C9H11NO3 181.190 0 1.13 5 cer(d18∶0/23∶0) M+H C41H83NO3 637.637 3 1.30 6 palmitic acid M-H C16H32O2 256.424 1 1.31 7 stearic acid M-H C18H36O2 284.271 5 1.31 8 L-threonine M+H C4H9NO3 119.120 0 1.33 9 D-xylose M-H C5H10O5 150.130 0 1.34 10 N-acetyl-D-glucosamine M-H C8H15NO6 221.210 0 1.39 11 meso-2,6-diaminopimelic acid M+H C7H14N2O4 190.197 1 1.39 12 leinoleic acid M+H C18H32O2 280.445 5 1.41 13 choline M+H C5H15NO 104.170 8 1.56 14 L-rhamnose monohydrate M-H C6H12O5 164.160 0 1.64 15 docosapentaenoic acid M-H C22H34O2 330.255 9 1.67 16 proline M-H C5H9NO2 115.130 0 1.93 17 fructose 1,6-bisphosphate M+H C6H14O12P2 339.996 0 2.22 18 glucose 6-phosphate M+H C6H13O9P 260.135 8 2.28 19 fucose M-H C6H12O5 164.150 0 2.34 20 L-proline M-H C5H9NO2 115.063 3 2.34 21 PG(18∶0/20∶3(8Z,11Z,14Z)) M-H C44H81O10P 800.556 7 5.96 22 tetracosanoic acid M-H C24H48O2 368.636 7 7.07 23 orotidylic acid M-H C10H13N2O11P 368.190 8 7.65 24 sphinganine M+H C18H39NO2 301.507 8 7.72 25 valine M-H C5H11NO2 117.150 0 7.74 26 cervonoyl ethanolamide M-H C24H36O3 372.540 8 7.94 27 phytosphingosine M+H C18H39NO3 317.507 2 7.94 28 tryptophan M+H C11H12N2O2 204.230 0 7.97 29 trihexosylceramide (d18∶1/12∶0) M-H C48H89NO18 967.608 0 8.10 30 histidine M+H C6H9N3O2 155.160 0 8.45 31 L-asparagine M-H C4H8N2O3 132.120 0 9.65 32 galactinol dihydrate M-H C12H26O13 378.327 0 9.66 33 3-hydroxydodecanoyl carnitine M+H C19H37NO5 359.500 8 9.70 34 L-cysteine M+H C3H7NO2S 121.120 0 9.84 35 cysteinyl-threonine M-H C7H14N2O4S 222.067 4 9.98 36 D-mannose M-H C6H12O6 180.160 0 10.10 37 MG (0∶0/24∶1(15Z)/0∶0) M-H C27H52O4 440.386 6 10.11 38 4-(methylnitrosamino)-1-(3-pyridyl)-1-butanol glucuronide M-H C16H23N3O8 385.369 1 11.32 39 D-glucose M-H C6H12O6 180.160 0 11.34 40 desmosine M+H C24H40N5O8 526.603 1 11.38 41 L-methionine M+H C5H11O2NS 149.210 0 11.59 42 glycogen M-H C24H42O21 666.577 7 11.90 43 levan M-H C18H32O16 504.437 1 11.90 44 D-galactose M-H C6H12O6 180.160 0 11.92 45 L-beta-aspartyl-L-aspartic acid M+H C8H12N2O7 248.190 1 12.00 46 muramic acid M-H C9H17NO7 251.233 8 12.16 47 1-pyrroline-2-carboxylic acid M-H C5H7NO2 113.114 6 12.25 48 ADP-glucose M-H C16H25N5O15P2 589.341 7 12.25 49 DG(42∶10) M+H C45H68O5 688.506 7 12.27 50 isoleucine M-H C6H13NO2 131.170 0 12.55 51 leucine M-H C6H13NO2 131.170 0 12.79 52 PGP(16∶1(9Z)/18∶0) M-H C40H78O13P2 828.491 8 12.99 53 PGP(16∶0/20∶4) M+H C42H76O13P2 850.992 6 13.01 54 TG(62∶6) M-H C65H114O6 990.861 5 13.60 55 ganglioside GM3 (d18∶1/16∶0) M-H C57H104N2O21 1152.713 2 14.15 56 valyl-methionine M+H C10H20N2O3S 248.342 0 14.18 57 DG(18∶2n6/0∶0/22∶6n3) M-H C44H70O5 678.522 3 15.27 58 PS(16∶0/18∶2) M-H C40H74NO10P 759.990 0 15.90 59 PGP(18∶1/22∶6) M-H C46H78O13P2 900.491 8 16.62 60 CDP-DG(16∶0/18∶0) M-H C46H85N3O15P2 981.545 6 17.41 61 TG(22∶6(4Z,7Z,10Z,13Z,16Z,19Z)/24∶0/22∶6(4Z,7Z,10Z,13Z,16Z,19Z)) M-H C71H114O6 1 062.861 5 18.28 62 TG(24∶0/24∶0/24∶0) M-H C75H146O6 1 143.111 9 19.25 63 serine M-H C3H7NO3 105.090 0 27.23 64 alanine M-H C3H7NO2 89.090 0 27.28 
下载: 导出CSV
表 2 UHPLC-MS/MS分析测定的质谱条件
序号 化合物名称 保留时间（t/min） 分子式 单糖分子量 衍生物分子量 母离子 子离子 碰撞电压（eV） 1 D-甘露糖 2.012 C6H12O6 180.1 512.1 511.1 175.0, 217.1 34 2 D-核糖 2.216 C5H10O5 150.1 482.1 481.1 175.0, 217.1 31 3 L-鼠李糖 2.423 C6H14O6 164.1 496.1 495.1 175.0, 217.1 31 4 D-果糖 2.504 C6H12O6 180.1 512.1 511.1 175.0, 217.1 34 5 D-葡萄糖 3.725 C6H12O6 180.1 512.1 511.1 175.0, 217.1 34 6 D-木糖 3.917 C5H10O5 150.1 482.1 481.1 175.0, 217.1 31 7 D-半乳糖 3.918 C6H12O6 180.1 512.1 511.1 175.0, 217.1 34 8 D-阿拉伯糖 4.086 C5H10O5 150.1 482.1 481.1 175.0, 217.1 31
下载: 导出CSV
表 3 单糖衍生物的标准曲线及定量限和检测限
序号 化合物 回归方程 r 浓度范围（μg/ml） 定量限（ng/ml） 检测限（ng/ml） 1 D-甘露糖 Y = 383.2 X − 92.4 0.996 0.05~10 20 5 2 D-核糖 Y = 656.8 X − 109.5 0.994 0.10~20 50 20 3 L-鼠李糖 Y = 1025.3 X − 386.4 0.992 0.50~100 20 5 4 D-果糖 Y = 902.3 X − 133.1 0.994 0.10~20 100 50 5 D-葡萄糖 Y = 2875.3 X − 342.9 0.993 0.50~100 100 50 6 D-木糖 Y = 2391.1 X − 1004.6 0.995 0.05~10 50 20 7 D-半乳糖 Y =3482.4 X − 1093.5 0.998 1.00~200 100 50 8 D-阿拉伯糖 Y = 5436.8 X − 2102.3 0.992 5.00~1000 50 20
下载: 导出CSV
表 4 Nr-CWS提取物（1~6）中8种单糖成分的含量测定结果
提取物编号 单糖成分(μg/ml) D-甘露糖 D-核糖 D-鼠李糖 D-果糖 D-葡萄糖 D-木糖 D-半乳糖 D-阿拉伯糖 1 0.9 5.3 12.2 18.9 55.1 20.9 320.8 456.1 2 2.1 4.6 21.4 12.4 48.3 19.2 205.6 504.8 3 3.2 3.5 30.5 9.8 61.9 23.1 223.0 327.3 4 5.5 6.6 19.8 15.4 45.8 27.8 305.4 462.8 5 1.5 4.9 23.4 14.7 39.1 12.1 311.7 489.1 6 4.7 7.6 25.1 22.5 52.7 27.2 289.2 510.8 平均值 3.0 5.4 22.1 15.6 50.5 21.7 276.0 458.5
下载: 导出CSV
-
[1] 林清强, 石颖岚, 李琼, 等. 红色诺卡氏菌细胞壁骨架多糖成分的分离纯化[J]. 赤峰学院学报(自然科学版), 2015, 31(16):17-19. [2] 黄文伟, 谢必峰. 基于响应面法对红色诺卡氏菌发酵条件的优化及其发酵动力学研究[J]. 药物生物技术, 2015, 22(1):49-52. [3] 张祝兰, 林善, 唐文力, 等. 红色诺卡氏菌细胞壁骨架的理化性质、化学成分及含量测定的研究[J]. 中国抗生素杂志, 2002, 27(9):532-534. doi: 10.3969/j.issn.1001-8689.2002.09.006 [4] AZUMA I, TANIYAMA T, YAMAWAKI M, et al. Adjuvant and antitumor activities of <italic>Nocardia</italic> cell-wall skeletons[J]. Gan,1976,67(5):733-736. [5] 张元芬. 红色诺卡氏菌细胞壁骨架(N-cws)通过产生LAK细胞辅助因子对人LAK细胞的增强作用[J]. 福建医药杂志, 1991, 13(5):10. [6] 梁宇庭, 周骏辉, 南铁贵, 等. 柱前衍生化UPLC-MS/MS测定12种单糖含量的方法学研究及其应用[J]. 中国中药杂志, 2018, 43(22):4469-4473. [7] 胡蓉蓉, 姚鑫. UPLC-MS/MS测定银杏叶提取物中10个黄酮类成分的含量[J]. 中国实验方剂学杂志, 2017, 23(24):90-95. [8] 王笑笑, 周勇, 徐国群, 等. 黄酮类成分在蜂蜜抗菌性中的效能研究[J]. 中国现代应用药学, 2017, 34(3):363-369. [9] 周彦强, 吴光斌, 陈发河. PMP柱前衍生化HPLC法测定黄秋葵多糖的单糖组成[J]. 食品科学, 2019, 40(4):266-271. doi: 10.7506/spkx1002-6630-20180130-426 [10] XUE S J, WANG L L, CHEN S Q, et al. Simultaneous analysis of saccharides between fresh and processed <italic>Radix</italic> rehmanniae by HPLC and UHPLC-LTQ-orbitrap-MS with multivariate statistical analysis[J]. Molecules,2018,23(3):E541. doi: 10.3390/molecules23030541 [11] JIANG W X, DI S X, HUA H M, et al. Structural characterization of polysaccharide from <italic>Cyclocarya paliurus</italic> leaves and itsα-glucosidase inhibitory effect[J]. Chin Tradition Herb Drugs,2017,48(8):1524-1528. [12] 张璐瑶, 赵峡, 陈欢欢. 糖类化合物PMP衍生分析进展[J]. 分析测试学报, 2016, 35(3):367-372. doi: 10.3969/j.issn.1004-4957.2016.03.020 [13] LI H L, LONG C N, ZHOU J, et al. Rapid analysis of mono-saccharides and oligo-saccharides in hydrolysates of lignocellulosic biomass by HPLC[J]. Biotechnol Lett,2013,35(9):1405-1409. doi: 10.1007/s10529-013-1224-4 [14] GAO Y Y, JIANG Y, CHEN G C, et al. A sensitive and rapid UPLC-MS/MS method for determination of monosaccharides and anti-allergic effect of the polysaccharides extracted from <italic>Saposhnikoviae radix</italic>[J]. Molecules,2018,23(8):E1924. doi: 10.3390/molecules23081924 [15] 赵丹, 冯峰, 粟有志, 等. 超高效液相色谱-串联质谱法测定螺旋藻多糖的单糖组成[J]. 色谱, 2017, 35(4):413-420. [16] FAN B L, LI T T, SONG X F, et al. A rapid, accurate and sensitive method for determination of monosaccharides in different varieties of <italic>Osmanthus fragrans</italic> Lour by pre-column derivatization with HPLC-MS/MS[J]. Int J Biol Macromol,2019,125:221-231. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2018.12.033 [17] 王媛媛, 张晖, 杨俊松, 等. 柱前衍生化高效液相色谱法分析9种多糖中的单糖组成[J]. 济宁医学院学报, 2016, 39(4):241-244. doi: 10.3969/j.issn.1000-9760.2016.04.004 [18] WU X D, JIANG W, LU J J, et al. Analysis of the monosaccharide composition of water-soluble polysaccharides from <italic>Sargassum fusiforme</italic> by high performance liquid chromatography/electrospray ionisation mass spectrometry[J]. Food Chem,2014,145:976-983. doi: 10.1016/j.foodchem.2013.09.019 [19] 李婷婷, 王雪吟, 胡丹荔, 等. 柱前衍生法测定桂花多糖中的6种单糖的含量[J]. 食品工业, 2019, 40(4):323-327. [20] 符梦凡, 赵一帆, 阎卫东. 柱前衍生化HPLC法分析枸杞多糖中单糖组成[J]. 食品科学, 2018, 39(18):186-191. doi: 10.7506/spkx1002-6630-201818029 -
点击查看大图
计量
- 文章访问数: 10638
- HTML全文浏览量: 2827
- PDF下载量: 39
- 被引次数: 0
