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中药鹿茸草为玄参科植物绵毛鹿茸草(Monochasma savatier Franch.)或沙氏鹿茸草(Monochasma sheareri Franch. ex Maxim.)的全草,又名白毛鹿茸草、千年艾、白头翁、六月霜等,属于多年生半寄生植物,生长于江苏、浙江、江西、福建、湖南等地以及日本九州的山坡向阳处、杂草中或林下[1-2]。鹿茸草具有清热解毒、祛风止痛、凉血止血等功效[2],是炎宁冲剂、炎宁片等的主要成分之一。早在20世纪70年代,我国就有用其治疗流脑带菌者的研究[3]。但是由于鹿茸草对生存环境条件的要求苛刻,野生资源贫乏,限制了鹿茸草的临床运用。本文对鹿茸草品种、药材标准、化学成分、药理作用等相关研究做一综述,为进一步研究和开发鹿茸草的临床应用提供帮助。
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《中国植物志》[4]记载鹿茸草属,包括白毛鹿茸草、沙氏鹿茸草、单花鹿茸草3种。《全国中草药汇编》记载鹿茸草为白毛鹿茸草[5],而《中药大辞典》和《中华本草》不但记录鹿茸草为绵(白)毛鹿茸草的全草,而且把沙氏鹿茸草也列为鹿茸草的原植物[2, 6]。也有研究把沙氏鹿茸草当作鹿茸草在用[7]。总体来看,目前主要以《中药大辞典》和《中华本草》中所记载的绵(白)毛鹿茸草和沙氏鹿茸草入药。由于入药品种的不同,对于鹿茸草的药材标准也不近相同。大多数地区的饮片规范认为其用量为9~15 g,但少部分地区,如浙江、江西的饮片炮制规范规定其用量为15~30 g,而且除安徽省中药饮片炮制规范外,其他地区均未对其含量测定做出具体要求。据此推测不同地区可能是因为使用不同品种来源的鹿茸草作为中药饮片,导致其有效成分含量不同,因此有必要对两种鹿茸草进行全面的评价,为科学合理确定鹿茸草的药用品种与中药饮片标准以及合理用药提供依据。
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对于鹿茸草的化学成分研究方面的报道较少。其中矢原正治、Kohda等[8-9]报道了经70%丙酮提取后的绵毛鹿茸草地上部分含有MS-5和MS-6两种环烯醚萜苷,以及梓醇苷、巴斯苷、桃叶珊瑚苷、洋丁香酚苷、去氢洋丁香酚苷、去甲玉叶金花苷酸甲酯、7-O-乙酰基-8-表马钱子苷酸、甘露醇等。梁春媚等[10]对绵毛鹿茸草采用95%乙醇回流提取并用石油醚、乙酸乙酯萃取,经色谱分离和光谱鉴定,从石油醚和乙酸乙酯萃取部位分离鉴定了3个化合物,分别为胆甾醇、芹菜素、木犀草素。郑巍等[11]对风干后的绵毛鹿茸草全草采用75%乙醇提取并从氯仿萃取部位分离鉴定了8个化合物,分别为7,8-去氢草苁蓉内酯、阿基醇、甘草素、β-谷甾醇、对羟基桂皮酸、2-羟基-4-甲氧基苯甲酸、对羟基苯乙醇和原儿茶酸。Li等[12]从绵毛鹿茸草水提物中分离得到11种化合物,分别为5种新的苯乙醇苷类化合物,命名为绵毛鹿茸草苷A-E,和6种已知化合物,分别为毛蕊花苷、异毛蕊花苷、蝴蝶草苷B、肉苁蓉苷D、广防风苷A、小花水苏苷B。朱莹莹等[13]对绵毛鹿茸草的抗菌活性部位中苯乙醇总苷通过柱层析和甲醇洗脱分离得到8个化合物,分别为毛蕊花苷、蝴蝶草苷B、异毛蕊花苷、绵毛鹿茸草苷A、小花水苏苷B、(-)-开环异落叶松树脂酚、7,7′-二氢开环异落叶松树脂酚、(+)-异落叶松脂醇。崔言坤等[14]首次利用大孔吸附树脂和动态轴向系统对70%乙醇提取的干燥粉碎后的绵毛鹿茸草提取液中3种苯乙醇苷类化合物:毛蕊花苷、异毛蕊花苷和蝴蝶草苷B的分离制备工艺进行探究。苏子豪等[15]对经95%乙醇提取、石油醚萃取后得到的绵毛鹿茸草蜡状物采用正己烷溶解、色谱纯化、气质谱(GC-MS)联用分析方法鉴定出12个化合物的结构,分别为苯甲酰胺、2,4-二(1,1-二甲基)-苯酚、1,1-二(1,3-二丙基)-苯、1,2-二苯基环丙烷、3,5-二叔丁基-4-羟基苯甲醛、十六酸乙酯、棕榈酸、1,2-苯二甲酸丁基 2-甲基丙基酯、十八酸乙酯、油酸、十八碳三烯酸、9,12,15-十八碳三烯酸。
此外,有研究报道了不同来源鹿茸草或者不同采摘时间的鹿茸草的一些主要化学成分含量变化较大。张舒婷等[16]通过对来自浙江、福建、江西、江苏、山东、湖北、安徽的绵毛鹿茸草药材粉末醇提物中木犀草素的含量进行测定,发现不同来源的鹿茸草样品中木犀草素含量差异较大,其中来自浙江的鹿茸草样品中木犀草素含量最高(0.209%),来自安徽的鹿茸草样品中木犀草素含量最低(0.104%)。同时,李雪玲等[17]采用HPLC指纹图谱测定2008年8月1日到2012年10月10日10批不同采收时间的绵毛鹿茸草药材全草醇提物的指纹图谱,发现不同批次的鹿茸草药材的含量差距较大。
综合以上研究情况,已报道的鹿茸草中的主要化学成分(见表1)主要为黄酮类(芹菜素、木犀草素和甘草素)、苯乙醇苷类(异毛蕊花苷、毛蕊花苷、蝴蝶草苷B、肉苁蓉苷D、广防风苷A、小花水苏苷B)、木质素类(开环异落叶松树脂酚、7,7′-二氢开环异落叶松树脂酚和(+)-异落叶松脂醇)、环烯醚萜类(MS-5、MS-6、7,8-去氢草苁蓉内酯、桃叶珊瑚苷、梓醇苷、巴斯苷)和有机酸等。而且不同来源、不同采收时间的鹿茸草药材成分含量不同,临床所用鹿茸草的用量与疗效也会存在一定的差异性。
表 1 鹿茸草中主要化学成分
化学成分 化学结构式 化学成分 化学结构式 芹菜素 (-)-开环异落叶松树脂酚 木犀草素 (+)-异落叶松脂醇 甘草素 7,7’-二氢开环异落叶松树脂酚 毛蕊花苷 7,8-去氢草苁蓉内酯 异毛蕊花苷 梓醇苷 蝴蝶草苷B 巴斯苷 肉苁蓉苷D MS-5 广防风苷 A MS-6 小花水苏苷B 桃叶珊瑚苷 -
鹿茸草味苦、涩,性凉,能清热解毒、祛风止痛、凉血止血,主治感冒、咳嗽、肺炎发热、小儿鹅口疮、牙痛、风湿骨痛、疮疖痈肿、月经不调、崩漏、赤白带下、便血、吐血、外伤出血等[2]。《湖南药物志》中记载鹿茸草12 g水煎兑冰糖治疗咳嗽,12~18 g治月经不调及崩漏,15 g治疗风火牙痛、大便下血,鹿茸草30~90 g治风湿骨痛,还可捣烂外敷来治疗创伤及烫伤,提示鹿茸草的功效作用可能与其用量有关。《江西草药》记载鹿茸草还可治疗小儿高热惊风、急性胃肠炎、菌痢、乳痈肿痛及吐血。
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20世纪70~80年代,使用沙氏鹿茸草制成的滴鼻剂处理流脑带菌者,具有较好的抑菌作用[3]。杨燕妮等[7]通过对炎宁糖浆的研究发现沙氏鹿茸草具有抗菌作用,除能杀真菌外,还能保护福氏痢疾杆菌、绿脓杆菌和大肠埃希菌感染的小鼠。杨蓓芬等[18]发现绵毛鹿茸草70%乙醇提取液和60%丙酮提取液分别是肺炎双球菌和枯草芽孢杆菌的良好抑制剂。Liu等[19]研究发现绵毛鹿茸草具有抗菌、抗炎活性,绵毛鹿茸草中的苯乙醇总苷(0.0625~16 mg/ml)对铜绿假单胞菌、肺炎链球菌和大肠埃希菌均有抑制作用,苯乙醇总苷(60~180 mg/kg)能延长铜绿假单胞菌或金黄色葡萄球菌感染所致败血症小鼠的存活率,可用于铜绿假单胞菌或金黄色葡萄球菌所引起的呼吸道感染和肺炎。朱莹莹[13]发现鹿茸草中的毛蕊花苷(250~500 mg/kg)和异毛蕊花苷(250~500 mg/kg)对铜绿假单胞菌造成的急性肺损伤模型具有一定的保护作用。
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Kohda等[9]发现鹿茸草70%丙酮提取物能明显抑制兔晶体醛糖还原酶(AR)的活性,可治疗由于醛糖还原酶活性增加引起的糖性白内障。Shi等[20]研究发现绵毛鹿茸草对心肌具有保护作用,绵毛鹿茸草中的苯乙醇总苷(150~600 μg/ml)能显著提高心肌细胞的存活率,降低心肌梗死大鼠的T波升高和心肌组织病理学改变,显著降低梗死面积,提高抗氧化能力。钟仙龙[21]发现沙氏鹿茸草多糖浓度在0.4~2.0 mg/ml之间时,能清除羟基自由基和
${\rm{NO}}_2^-$ 、促进超氧阴离子的形成,从而实现其抗氧化作用。 -
由沙氏鹿茸草,白花蛇舌草和鸭跖草制成的炎宁颗粒可用于治疗上呼吸道感染、扁桃体炎、尿路感染、急性菌痢、肠炎等多种炎症[22]。乡世健等[23]研究发现沙氏鹿茸草具有明显的抗炎和止咳作用,可抑制角叉菜胶所致的小鼠足肿胀,延长氨水致小鼠咳嗽的潜伏期(P<0.01),减少咳嗽的次数(P<0.05)。杨昊钰等[24]发现绵毛鹿茸草中的异毛蕊花苷、毛蕊花苷、蝴蝶草苷B具有明显的抗炎活性,能抑制小鼠单核巨噬细胞NO的释放量。Gao等[25]发现绵毛鹿茸草中的异毛蕊花苷可以抑制与炎症有关的COX-2、iNOS、 TNF-α、IL-6和IL-1β的表达,抑制NF-κB通路,从而抑制炎症反应。
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陈茂梧先生常用鹿茸草和其他中药制成脑肿瘤合剂来治疗脑肿瘤,具有较好的临床疗效[26]。鹿茸草还被用于治疗血不上荣型颈椎病[27]。亦有医家用鹿茸草来治疗以反复发作性癫痫或高颅压及定位体征为主要表现的脑瘤型脑血吸虫病[28]。民间有用鹿茸草治疗癫痫的效方。曹可可等[29]发现鹿茸草中的异毛蕊花苷、毛蕊花苷、绵毛鹿茸草苷A在100~200 μmol/L浓度范围内可保护L-谷氨酸引起的神经元损伤,改善谷氨酸所导致的神经细胞存活率的下降、神经细胞凋亡以及钙超载现象。季士亮等[30]研究表明鹿茸草中的苯乙醇苷类化合物蝴蝶草苷B、绵毛鹿茸草苷A(25、50、100 μmol/L)能保护β-淀粉样蛋白(Aβ)引起的脑损伤,改善阿尔兹海默症。
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20世纪70年代以绵毛鹿茸草为主要成分制成的白毛鹿茸草片能有效清除痰饮素疾,改善呼吸道功能,具有较好的祛痰作用。刘清池等[31-32]采用鹿茸草与其他药配合治疗血小板减少症。也有医生利用沙氏鹿茸草来治疗白血病以及鹿茸草治疗产后感染的记录[33-34]。
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综上所述,鹿茸草作为一种半寄生植物,其生长发育对宿主具有高度依赖性[35],限制了其资源的广泛生长。对鹿茸草的研究总体较少,对鹿茸草的药用品种与药材标准缺乏科学统一的规范,更进一步限制了其临床应用与开发。在化学成分方面,鹿茸草的主要化学成分为黄酮、苯乙醇苷及环烯醚萜等;对于鹿茸草药理作用研究较少且零散,因此有必要系统研究鹿茸草的化学成分、药理作用以及作用机制,弄清楚鹿茸草的药效物质基础,为鹿茸草的临床应用、品种确定以及进一步的开发和利用提供依据。
Research progress of Herba Monochasmae savatii
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摘要: 鹿茸草始见于《植物名实图考》,是玄参科植物绵毛鹿茸草(Monochasma savatier Franch.)或沙氏鹿茸草(Monochasma sheareri Franch. ex Maxim.)的全草,具有清热解毒、祛风止痛、凉血止血等多种功效。本文利用CNKI、PubMed和SciFinder以鹿茸草(Monochasma savatier Franch.或Monochasma sheareri Franch. ex Maxim.)为主题词进行检索,对鹿茸草的品种、药材标准、化学成分以及生物活性与药理作用等文献进行综述,为鹿茸草的研究、开发、应用以及临床合理使用提供基础。Abstract: Herba Monochasmae savatii, whole plant of the Monochasma savatier Franch. or Monochasma sheareri Franch. ex Maxim., scrophulariaceae, was first found in "Zhiwu Mingshi Tukao". It has the effects of clearing heat and detoxicating, dispelling wind and relieving pain, cooling the blood and stopping bleeding, etc. This review used Monochasma savatier Franch. or Monochasma sheareri Franch. ex Maxim. as the subject term to search CNKI, PubMed and SciFinder, and reviewed the classification of medicinal material, medicinal standards, chemical components, biological activities and pharmacological effects of Herba Monochasmae savatii in recent years to provide a basis for the research, development and clinical rational application.
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Key words:
- Monochasmae savatii /
- pharmacological effects /
- chemical components /
- medicinal standards
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肾衰宁颗粒由太子参、黄连、制半夏、陈皮、茯苓、大黄、丹参、牛膝、红花、甘草等十味中药制成;具有补气健脾,活血化痰,祛浊的功效[1]。有文献表明,肾衰宁在治疗慢性肾脏疾病中疗效较为显著[2];在尿毒症腹膜透析患者的治疗过程中能够降低血清硫酸吲哚酯浓度[3];对于慢性肾脏病的Ⅳ期患者,在西医基础治疗的同时服用肾衰宁颗粒,可以明显改善肾功能,同时提升患者的治愈率,具有较高的临床使用价值[4]。由于中药成分复杂[5],使得如何控制中药的质量成为十分重要的问题。指纹图谱是在了解中药物质整体作用的基础上,通过光谱和色谱技术获得中药化学成分的光谱或色谱图,以鉴别中药的真伪,评价质量的一致性和产品的稳定性,其具有信息量大、特征性强、完整性和模糊性等特点[6]。指纹图谱中的质量控制技术既能保证中药的功效,又在实现中药现代化过程中起关键性作用[7]。因此,本实验以10个批次的肾衰宁颗粒为研究对象,拟建立肾衰宁颗粒的指纹图谱,对肾衰宁颗粒进行质量评价。
肾衰宁颗粒是由十味中药组成的复方制剂,其化学成分十分复杂,且许多复方治疗疾病的药物基础并不明显,因此检测成分必须是发挥药效的有效成分[8],本实验针对大黄中的大黄酚(chrysophanol)[9-10]、丹参中的丹酚酸B(salvianolic acid B)[11]、陈皮中的橙皮苷(hesperidin)[9, 12]3种指标性成分,进行HPLC法含量测定。在多成分的质量控制检测成本高而对照品紧缺的情况下,能较大程度地节约检验成本,又可较全面地控制该制剂的质量,保证临床用药的有效性和安全性,同时为肾衰宁颗粒的质量控制提供参考。
1. 材料
1.1 仪器
Agilent 1260高效液相色谱仪(美国Agilent公司),包含G1311C四元泵,G1329B自动进样器,G1316A柱温箱,G4212B-DAD二极管阵列检测器,Chemstation色谱工作站;光电分析天平(德国Sartorius公司,CPA 225D型),最大载荷220 g,分度值0.01 mg;冷冻真空浓缩仪(丹麦Labogene公司,ScanVac ScanSpeed 40型);超声波清洗器(上海科导超声仪器有限公司,SK7200H型);涡旋混匀器(海门市其林贝尔仪器制造有限公司,Vortex QL-901型)。
1.2 试剂
肾衰宁颗粒(德元堂制药集团,批号:51103111、51103009 346、51103010 471、51103011 593、51103105、51103018 486、41103033 563、51103110、61103102、61103101)。蜕皮激素(ecdysterone,批号:P11N6F5706)、甘草苷(liquiritin,批号:2O1027BA14)、甘草酸(glycyrrhizic acid,批号:230A6B1)、大黄酚(chrysophanol,批号:T31O6F5345)、丹酚酸B(salvianolic acid B,批号:Y14M7H14804)、橙皮苷(hesperidin,批号:K02M3C1)对照品,均由上海源叶有限公司提供。大黄素(modin,批号:110756-200110)、盐酸小檗碱(berberine hydrochloride,批号:09030522)对照品,由中国食品药品检定研究院提供。甲醇、乙腈、甲酸,均为德国Merck公司生产,色谱纯。二氯甲烷,色谱纯。水为纯净水,娃哈哈公司生产。
2. 方法与结果
2.1 色谱条件
色谱柱:Waters SunFire™ C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)。流动相A:乙腈;流动相B:0.1%甲酸溶液,梯度洗脱。流速:1 ml/min。柱温:25 ℃。进样量:10 μl。检测波长:254 nm。梯度洗脱条件见表1。
表 1 梯度洗脱条件时间(t/min) 乙腈(%) 0.1%甲酸溶液(%) 0 5 95 1 23 77 18 25 75 19 30 70 31 75 25 60 85 15 2.2 对照品溶液的制备
精密依次称取丹酚酸B、橙皮苷、大黄素标准品10.25、10.35、10.05 mg,分别置于10 ml容量瓶中,以纯甲醇定容至刻度,摇匀,得储备液并将其分装后储存于−20 ℃的冰箱中。精密称取10.10 mg大黄酚,置于10 ml容量瓶中,加入少量二氯甲烷溶解,超声处理3 min,然后用纯甲醇稀释至刻度,摇匀,得到对照品的储备液,置于−20 ℃冰箱保存。
2.3 供试品溶液的制备
取肾衰宁颗粒适量,研磨成细粉,混合均匀,精密称取0.10 g,加适量70%甲醇溶液使其溶解,超声45 min,再用70%甲醇溶液定容至2 ml,冷却,过0.45 μm微孔滤膜后,取续滤液进样分析。
2.4 肾衰宁颗粒HPLC指纹图谱的建立
2.4.1 精密度试验
取肾衰宁颗粒(批号:41103033 563),按照“2.3”项制备供试品溶液,在“2.1”项色谱条件下连续进样5次,通过大黄素(7号色谱峰)作为参照峰,确定相对保留时间和相对峰面积。相对保留时间的RSD在1.0%以内,相对峰面积的RSD在2.0%以内,表明进样仪器的精密度良好。
2.4.2 重复性试验
取肾衰宁颗粒(批号:41103033 563),按照“2.3”项平行制备5份供试品溶液,测定在“2.1”项色谱条件下的相对保留时间和相对峰面积。相对保留时间RSD在1.0%以内,相对保留面积RSD在2.0%以内。表明该实验方法的重复性良好。
2.4.3 稳定性试验
取肾衰宁颗粒(批号:41103033 563),并根据“2.3”项下平行制备5份供试品溶液,在“2.1”项色谱条件下,分别记录0、4、8、24、36 h的相对保留时间和相对峰面积。相对保留时间RSD在1.0%以内,相对保留面积RSD在2.0%以内。表明供试样品溶液在36 h内稳定性好。
2.5 指纹图谱结果与分析
分别称取10个批次的肾衰宁粉末,按照“2.3”项制备供试品溶液,每个批次平行制备3份供试品溶液,记录图谱,见图1。利用中国药典委员会“中药色谱指纹图谱相似度评价系统2008A版”的软件,将10批次肾衰宁颗粒的图谱导入,将批号为61103102的样品溶液用作针对相似性计算校正的参考图。结果显示,1~9批制剂间指纹图谱与对照图谱之间相似度均不小于0.90,见表2,表明相似度良好。对保留时间0~60 min内的色谱峰进行分析,均有22个稳定的特征峰,确定其为肾衰宁的共有指纹峰,经过标准品比对,其中,6号峰为橙皮苷,14号峰为丹酚酸B,21号峰为大黄酚。
表 2 10批肾衰宁颗粒HPLC指纹图谱相似度样品号 S1 S2 S3 S4 S5 S6 S7 S8 S9 S10 对照指纹图谱 S1 1.000 0.980 0.910 0.941 0.934 0.948 0.916 0.941 0.950 0.874 0.965 S2 0.980 1.000 0.934 0.934 0.932 0.945 0.951 0.946 0.978 0.867 0.973 S3 0.910 0.934 1.000 0.952 0.947 0.937 0.972 0.940 0.945 0.914 0.973 S4 0.941 0.934 0.952 1.000 0.990 0.984 0.951 0.971 0.923 0.940 0.986 S5 0.934 0.932 0.947 0.990 1.000 0.978 0.938 0.976 0.910 0.910 0.979 S6 0.948 0.945 0.937 0.984 0.978 1.000 0.954 0.987 0.931 0.923 0.986 S7 0.916 0.951 0.972 0.951 0.938 0.954 1.000 0.949 0.966 0.913 0.979 S8 0.941 0.946 0.940 0.971 0.976 0.987 0.949 1.000 0.928 0.890 0.980 S9 0.950 0.978 0.945 0.923 0.910 0.931 0.966 0.928 1.000 0.892 0.969 S10 0.874 0.867 0.914 0.940 0.910 0.923 0.913 0.890 0.892 1.000 0.937 对照指纹图谱 0.965 0.973 0.973 0.986 0.979 0.986 0.979 0.980 0.969 0.937 1.000 2.6 肾衰宁颗粒中3种有效成分的含量测定
2.6.1 线性结果考察
按照“2.2”项下制备标准品溶液,得到混合对照品色谱图见图2。将标准品储备液用纯甲醇稀释,丹酚酸B浓度梯度为:10、20、40、80和100 μg/ml;橙皮苷浓度梯度为:40、80、160、320和400 μg/ml;大黄酚浓度梯度为:8、16、40、100和350 μg/ml。在“2.1”项色谱条件下,分别记录3种成分的峰面积,以峰面积(Y)对浓度(X)进行线性回归,结果见表3。
表 3 各成分线性关系对照品 回归方程 r 线性范围(μg/ml) 橙皮苷 Y=2.391 8X–2.798 3 0.999 7 40~400 丹酚酸B Y=10.689X–5.578 3 0.999 8 10~100 大黄酚 Y=58.983X+121.99 0.999 9 7~350 2.6.2 精密度试验
取同一对照品溶液,根据“2.1”项下色谱条件进行测定,重复进样5次,并记录峰面积。橙皮苷、丹酚酸B、大黄酚峰面积的RSD分别为0.17%、0.20%、0.15%,表明仪器精密度良好。
2.6.3 检测限和定量限
精密吸取橙皮苷、丹酚酸B、大黄酚对照品溶液适量,使用甲醇逐步稀释,至色谱图中上述3种成分的峰高分别为噪音的3倍和10倍,测得橙皮苷的检测限和定量限分别为0.18和1 μg/ml;丹酚酸B的检测限和定量限分别为0.3和1.2 μg/ml;大黄酚的检测限和定量限分别为1和5 μg/ml。
2.6.4 稳定性试验
取同一供试品溶液(批号:41103033 563),并根据“2.1”项色谱条件在0、2、4、8、24、36 h测定。橙皮苷、丹酚酸B、大黄酚的峰面积的RSD分别为2.01%、2.22%、2.05%,结果表明:供试品在36 h内稳定。
2.6.5 重复性试验
取同一供试品溶液(批号:41103033 563),平行制备6份,并根据“2.1”项色谱条件进行测定,橙皮苷、丹酚酸B、大黄酚的峰面积的RSD分别为0.67%、2.00%、2.02%,表明系统重复性良好。
2.6.6 加样回收率试验
精密量取肾衰宁溶液1 ml,分别加入100%含量橙皮苷对照品(理论值为192.02 μg),100%含量丹酚酸B对照品(理论值为62.66 μg),100%含量大黄酚对照品(理论值35.22 μg),按照“2.2”项平行制备6份,并根据“2.1”的色谱条件进行测量,按照下述公式计算加样回收率,平均加样回收分别为119.20%、84.69%、84.58%。结果见表4。
表 4 加样回收率试验结果成分 取样量(V/ml) 样品含量(m/μg) 加入量(m/μg) 测得量(m/μg) 回收率(%) 平均回收率(%) 橙皮苷 1.00 383.02 95.88 773.46 101.80 100.27 1.00 380.39 95.88 764.91 100.26 1.00 380.31 95.88 763.64 99.95 1.00 384.46 95.88 771.17 100.83 1.00 385.81 95.88 772.95 100.94 1.00 389.20 95.88 764.32 97.81 丹酚酸B 1.00 120.79 31.80 250.42 101.91 98.82 1.00 122.50 31.80 251.14 101.12 1.00 125.56 31.80 248.78 96.87 1.00 127.57 31.80 254.87 100.07 1.00 127.74 31.80 251.44 97.25 1.00 127.75 31.80 249.44 95.66 大黄酚 1.00 72.67 17.79 138.19 92.06 97.36 1.00 69.62 17.79 135.41 92.44 1.00 68.46 17.79 140.83 101.69 1.00 71.03 17.79 141.25 98.66 1.00 68.98 17.79 141.57 102.00 1.00 71.92 17.79 141.17 97.30 回收率=(实测量-样品含量)/加入量×100%。
2.6.7 样品含量测定
取10批肾衰宁颗粒,按“2.2”项制备试液,按“2.1”项色谱条件测定,结果见表5。
表 5 10批肾衰宁样品中3种成分的测定结果药品批号 橙皮苷(μg/ml) 丹酚酸B(μg/ml) 大黄酚(μg/ml) 61103102 66.99 42.29 44.65 51103110 83.41 39.34 42.89 51103111 94.75 41.36 44.51 51103009 346 80.57 43.21 43.44 51103011 593 83.51 42.04 42.58 51103018 486 79.94 41.94 42.96 51103010 471 90.03 41.88 44.03 41103033 563 83.48 43.01 43.94 61103101 85,92 42.93 43.85 51103105 88.04 41.76 42.94 3. 讨论
3.1 检测波长的选择
在190~400 nm处全波长扫描,盐酸小檗碱、大黄素、大黄酚、丹酚酸B、蜕皮激素、甘草酸、甘草苷、橙皮苷分别在345、254、254、286、250、237、237、283 nm处有最大吸收,通过对比分析,在波长254 nm处,上述8种成分具有良好的响应,样品中相邻色谱峰的基线分离可以满足含量检测的要求。因此,选择波长254 nm作为检测波长。
3.2 样品前处理的方法优化
将肾衰宁粉末直接用水溶解后进样,发现样品出峰很少,所测成分在色谱条件下没有吸收。后用50%、70%、80%的甲醇溶解样品,发现用70%甲醇溶解出峰数最多,且所测成分在此条件下均有吸收,故选择70%甲醇进行样品的前处理。
3.3 流动相的选择
有文献报道,肾衰宁含量测定使用甲醇-0.1%磷酸[13]、乙腈-水-1%甲酸[14]、乙腈-05%磷酸[15]进行90 min的大梯度洗脱,发现色谱峰分不开,且特征峰较少。经过反复实验,确定乙腈-0.1%甲酸水溶液用作梯度洗脱的流动相,分离出样品中测得的特征峰,特征峰很多,峰形良好。
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表 1 鹿茸草中主要化学成分
化学成分 化学结构式 化学成分 化学结构式 芹菜素 (-)-开环异落叶松树脂酚 木犀草素 (+)-异落叶松脂醇 甘草素 7,7’-二氢开环异落叶松树脂酚 毛蕊花苷 7,8-去氢草苁蓉内酯 异毛蕊花苷 梓醇苷 蝴蝶草苷B 巴斯苷 肉苁蓉苷D MS-5 广防风苷 A MS-6 小花水苏苷B 桃叶珊瑚苷 -
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