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扶正化瘀胶囊（旧名扶正化瘀方）是针对肝纤维化“正虚血瘀”的基本病机研制而成的[1],该复方由丹参、桃仁、五味子、冬虫夏草、绞股蓝、松花粉六味药材组成[2-7]，丹参在方中活血祛瘀作为君药,冬虫夏草补虚损、益精气，桃仁助丹参活血祛瘀，共为臣药，松花粉益气润燥，绞股蓝清热解毒，两者共为佐药；五味子味酸，为引经使药。从中医角度出发，丹参、冬虫夏草、桃仁、松花粉、绞股蓝、五味子这六味药材的药效物质基础主要包含脂溶性的丹参酮类和水溶性的丹酚酸类、多糖、甾醇、多种氨基酸、多种维生素、挥发油、木脂素等物质。以上六味药合用共奏活血化瘀、益精养肝之功效，适用于肝纤维化证属“瘀血阻络，肝肾不足”者[8]。其临床疗效显著，已受国家发明专利保护，获得国家中药Ⅲ类新药证书。而且2006年扶正化瘀片通过美国食品药品监督管理局审批，免于进行Ⅰ期临床，直接进入Ⅱ期临床试验，并在2013年圆满完成Ⅱ期临床实验，成为肝病领域中首个通过美国Ⅲ期临床试验的中成药[9]，将来也有望成为第一个获准进入美国主流医药市场的复方中药。(标红的5处字体均用罗马字)
该复方在我国已使用多年，但由于其组分复杂，一直缺乏系统性研究，尽管目前关于该复方作用机制报道较多[10-15]，然而对于整个复方的入血成分还未见报道。而且复方组成复杂，比分析单位药材的入血成分更困难，因此，明确扶正化瘀胶囊各部分的入血成分对于该复方治疗效果、作用机制的深入研究具有重要意义。
UHPLC和Q-TOF/MS的串联技术在中药复方等复杂体系研究中占有一定优势，该技术集色谱的高效分离能力和质谱的高灵敏、高分辨、强定性能力于一体，已经成为中药复方化学成分分析和鉴定的有效手段之一[16-18]。本实验采用UHPLC-QTOF/MS技术首次对扶正化瘀胶囊中的入血成分进行快速分析，并对其成分进行药材归属鉴定，进一步阐明了扶正化瘀胶囊的药效物质基础，具有重要的临床意义。
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Agilent 1290 Infinity 液相系统，包括G4220A四元泵、G4226自动进样器G1316C柱温箱（安捷伦科技有限公司，美国）；Agilent 6538 UHD and Accurate-Mass Q-TOF/MS质谱仪，配有标准电喷雾离子源（ESI）及MassHunter Qualitative Analysis Software 分析工作站（安捷伦科技有限公司，江苏）；JY10001十万分之一电子天平（精密科学仪器有限公司，上海）；Heal Force SMART-N 超纯水机（力康生物医疗科技控股有限公司，香港）；Micro 17高速离心机（Thermo Fisher Scientific，美国）；甲醇、乙腈均为色谱纯试剂（Merck，德国），甲酸为色谱级试剂（ROE scientific INC，美国），水为实验室制备的超纯水，其他试剂均为分析级。
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丹参素、丹酚酸B、二氢丹参酮I、丹酚酸A、五味子乙素、苦杏仁苷、腺苷、五味子醇甲、绞股蓝皂苷XLIX、山奈酚对照品（一飞生物科技有限公司，纯度≥98%），批号分别为：76822-21-4、121521-90-2、87205-9-0、96574-01-5、61281-37-6。扶正化瘀胶囊（黄海制药有限责任公司，上海）购于益丰大药房，批号分别为：161220、170640、171116。
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取丹参素、丹酚酸B、二氢丹参酮I、丹酚酸A、五味子乙素对照品适量，精密称定后，用甲醇溶解并定容成10 mg/ml的对照品储备液。吸取各对照品溶液适量，用甲醇稀释成各对照品浓度约2 mg/ml的对照品混合溶液。
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称取扶正化瘀胶囊适量，配制成浓度为0.3 g/ml的混悬水溶液，供大鼠灌胃使用。取雄性SD大鼠6只，随机分为两组（空白组和给药组），给药前12 h禁食、不禁水，按照给药体积4 ml/kg（0.3 g/ml，临床4倍剂量）灌胃给药样品，空白组灌胃蒸馏水。给药23 min后采用眼眶取血约1.5 ml置离心管中，静置1 h后，离心（3 500 r/min，10 min）后取上清液约0.5 ml，−80 ℃冷冻保存。
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精确吸取50 μl血清，溶于150 μl 含有内标的100%甲醇中，涡旋30 s，静置5 min，于4 ℃、1 000 r/min离心10 min，取上清液，即得血清样品。
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色谱柱：ACQUITY UPLCHSS T3（2.1 mm×100 mm，1.8 μm，Waters Corporation，Ireland）。流动相由0.1%甲酸水溶液（A）-0.1%甲酸乙腈溶液（B）组成。梯度洗脱条件：0~3 min，2%B；3~18 min，2%~50%B；18~22 min，50%~95% B；22~25 min，95%B。平衡时间为10 min，流速为0.40 ml/min，分析所用时间为25 min。进样体积设置为3 μl，柱温箱温度为40 ℃，自动进样器的温度为4 ℃。
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电喷雾离子源采用正、负离子模式。正离子模式条件：毛细管电压4 V；干燥气体流速11 L/min；干燥气体温度350 ℃；雾化器压力45 psig；碎片电压120 V；skimmer电压60 V。质谱采集范围从100~1 100 m/z ，参比离子为121.051和922.010 m/z。负离子模式下，除了毛细管电压为 3.5 kV，其余条件与正离子模式相同。负离子模式下的参比离子分别为 119.036 3 和 966.000 7 m/z。
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根据国内外已有的专业数据库TCM@taiwan、TCMID（traditional Chinese medicine integrative database）和上海中科院化学专业数据库及相关研究文献，共收集了扶正化瘀胶囊六味药材中801个化学成分。利用Agilent公司研发的“Formula-Database-Generator”软件，通过各化学成分包含碳、氢、氧的个数，计算化合物精确的相对分子质量，建立化学成分的分子式和相对分子质量的数据库。
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精密吸取扶正化瘀胶囊血清样品溶液和对照品混合溶液200 μl于进样小瓶，按照上述质谱和色谱测试条件进行样品分析。同时检测空白血清、混合对照品溶液和含药血清在正离子检测模式下的总离子流图，如图1所示。
图 1 空白血清（A）、混合对照品溶液（B）、含药血清（C）在正离子模式下的总离子流图
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以正离子模式下3号峰二氢丹参酮I为例，说明扶正化瘀胶囊中的色谱峰鉴别过程。TIC图中的保留时间为10.453 min（图1B），色谱峰显示的准分子离子峰为279.101，利用Qualiative Analysis软件分析工具（calculator）精确计算质量数可能的元素组成（<5 ppm），结合数据库内已知的化合物质核比，可以初步确定分子式为C18H14O3。通过计算准分子离子的核素分布情况，得出同位素分布的理论值与实际值吻合良好，确定此峰为二氢丹参酮I（图2）。
图 2 正离子模式下二氢丹参酮Ⅰ的准确分子质量及同位素分布图
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根据飞行时间质谱测得的精确相对分子质量，比对所建的扶正化瘀胶囊化学成分数据库，应用 Qualiative Analysis质谱分析软件计算分子组成，将理论值与实测值进行比对，结合上述对照品鉴别结果及相关文献报道[19-20]，对扶正化瘀胶囊血清供试品在正、负离子模式下所得的色谱图中色谱峰进一步分析，其中，血清供试品在正离子模式下初步鉴别出43个化学成分，结果见表1。在负离子模式下初步鉴别出10个化学成分，结果见表2。其中，正、负离子模式下均有响应的有4个（表中标①）。对于化学成分的药材归属，见表1。
表 1 入血化学成分的正离子模式鉴别结果
编号 保留时间 (t/min) 化合物名称 分子式 M+X 理论分子量(m/z) 实际分子量(m/z) 误差(ppm) 归属药材 1 10.157 dihydrokaranone C15 H22 O (M+H)+ 219.174 1 219.174 3 2.01 Salvia miltiorrhiza Bge. 2 10.453 dihydrotanshinone I C18 H14 O3 (M+H)+ 279.101 0 279.101 4 0.29 Salvia miltiorrhiza Bge. 3 12.031 salvianonol C18 H20 O4 (M+H)+ 301.141 7 301.141 3 5.72 Salvia miltiorrhiza Bge. 4 10.009 isocryptotanshinone II C19 H20 O3 (M+H)+ 297.148 1 297.148 1 1.49 Salvia miltiorrhiza Bge. 5 11.078 sugiol C20 H28 O2 (M+H)+ 301.216 0 301.216 0 0.78 Salvia miltiorrhiza Bge. 6 11.636 salviol C20 H30 O2 (M+H)+ 303.231 9 303.232 2 −0.13 Salvia miltiorrhiza Bge. 7 12.762 dihydrovalepotriate C22 H32 O8 (M+H)+ 425.216 3 425.215 1 2.87 Salvia miltiorrhiza Bge. 8 7.232 4-methyl salicylaldehyde C8 H8 O2 (M+H)+ 137.059 9 137.059 8 0.05 Salvia miltiorrhiza Bge. 9 1.168 nicotinamide C6 H6 N2 O (M+H)+ 123.055 1 123.054 1 2.14 Cordyceps sinensis 10 0.642 histidine① C6 H9 N3 O2 (M+H)+ 156.075 8 156.076 8 1.52 Cordyceps sinensis 11 1.061 valine C5 H11 N O2 (M+H)+ 118.086 2 118.086 2 0.61 Cordyceps sinensis 12 1.357 adenosine C10 H13 N5 O4 (M+H)+ 268.104 2 268.104 4 −0.54 Cordyceps sinensis 13 0.765 arginine C6 H14 N4 O2 (M+H)+ 175.118 7 175.118 8 2.03 Cordyceps sinensis 14 0.634 lysine C6 H14 N2 O2 (M+H)+ 147.112 9 147.112 8 −0.45 Cordyceps sinensis 15 9.590 cis-9-octadecenoic acid C18 H34 O2 (M+NH4)+ 300.289 2 300.289 4 1.78 Cordyceps sinensis 16 9.360 octadecanoic acid C18 H36 O2 (M+NH4)+ 302.305 4 302.305 1 −0.76 Cordyceps sinensis 17 1.751 leucine C6 H13 N O2 (M+H)+ 132.102 1 132.101 3 −1.57 Cordyceps sinensis 18 1.361 pedatisectine B C5 H5 N5 (M+H)+ 136.062 2 136.061 8 1.02 Cordyceps sinensis 19 8.259 linoleic acid C18 H32 O2 (M+NH4)+ 298.274 0 298.274 1 0.9 Cordyceps sinensis 20 1.102 methionine C5 H11 N O2 S (M+H)+ 150.058 5 150.058 4 −0.61 Cordyceps sinensis 21 10.979 linoleic acid C18 H32 O2 (M+NH4)+ 298.273 9 298.274 1 2.57 Semen Persicae 22 4.726 glucose C6 H12 O6 (M+H)+ 181.070 5 181.070 8 0.95 Semen Persicae 23 9.648 GA17① C20 H26 O7 (M+Na)+ 401.158 3 401.159 2 −2.24 Semen Persicae 24 5.194 prunasin① C14 H17 N O6 (M+Na)+ 318.095 6 318.096 0 −1.94 Semen Persicae 25 9.623 gomisin R C22 H24 O7 (M+H)+ 401.158 5 401.159 1 2.71 Schisandra chinensis Fructus 26 11.168 2-(2-phenyl cyclohexyloxy) ethanol C14 H20 O2 (M+Na)+ 243.135 3 243.135 8 1.78 Schisandra chinensis Fructus 27 9.911 deangeloylgomisin F C23 H28 O8 (M+Na)+ 455.168 9 455.168 2 −0.19 Schisandra chinensis Fructus 28 12.524 schisandrin B C23 H28 O6 (M+Na)+ 423.177 5 423.177 6 1.88 Schisandra chinensis Fructus 29 8.333 gomisin Q C24 H32 O8 (M+Na)+ 471.198 1 471.198 2 1.56 Schisandra chinensis Fructus 30 9.130 (±)-gomisin m1 C22 H26 O6 (M+Na)+ 409.161 8 409.161 8 0.64 Schisandra chinensis Fructus 31 11.973 1,1alpha,4,5,6,7,7alpha,7beta-octahydro-1,1,7,7alpha-tetramethyl-2h-cyclopropa (alpha)-naphthalen-2-one C14 H22 O (M+H)+ 207.174 9 207.174 2 −2.61 Schisandra chinensis Fructus 32 6.870 1-phenyl-1,3-butanedion C10 H10 O2 (M+H)+ 163.075 5 163.075 8 −1.40 Schisandra chinensis Fructus 33 10.839 geranyl acetate C12 H20 O2 (M+H)+ 197.153 8 197.153 5 1.07 Schisandra chinensis Fructus 34 11.110 tigloylgomisin P C28 H34 O9 (M+NH4)+ 532.254 3 532.253 8 0.22 Schisandra chinensis Fructus 35 7.322 citronellyl acetate C12 H22 O2 (M+NH4)+ 216.195 3 216.195 4 2.48 Schisandra chinensis Fructus 36 0.814 gama-octalactone C8 H14 O2 (M+NH4)+ 160.133 0 160.132 9 0.27 Schisandra chinensis Fructus 37 9.607 gomisin D C28 H34 O10 (M+Na)+ 553.204 2 553.203 9 0.61 Schisandra chinensis Fructus 38 10.248 1,1α,2,4,6,7,7α,7β-octahydro-1,1,7,7α-tetra-methyl-5h-cyclopropa (α)-naphthalen-5-one C15 H22 O (M+H)+ 219.173 7 219.174 3 2.92 Schisandra chinensis Fructus 39 9.935 phenyl-2-propanone C9 H10 O (M+H)+ 135.080 2 135.080 2 1.81 Schisandra chinensis Fructus 40 11.834 prehispanolone① C20 H30 O3 (M+H)+ 319.226 3 319.225 7 2.56 Schisandra chinensis Fructus 41 9.919 psilostachyin C15 H20 O5 (M+H)+ 281.137 9 281.138 4 1.67 Schisandra chinensis Fructus 42 11.324 santlic acid C15 H22 O2 (M+H)+ 235.168 3 235.170 5 0.58 Schisandra chinensis Fructus 43 7.355 gomisin A C23 H28 O7 (M+H)+ 417.190 6 417.190 3 0.23 Schisandra chinensis Fructus 注：“①”表示正、负离子模式下都已鉴别出。 表 2 入血化学成分的负离子模式鉴别结果
编号 保留时间 (t/min) 化合物名称 分子式 M-X 理论分子量(m/z) 实际分子量(m/z) 误差(ppm) 归属药材 1 6.795 tanshindiol C C18 H16 O5 (M+COOH)− 357.098 9 357.099 7 −1.34 Salvia miltiorrhiza Bge. 2 13.681 paramiltioic acid C19 H24 O5 (M+COOH)− 377.161 6 377.161 9 −1.84 Salvia miltiorrhiza Bge. 3 0.812 histidine① C6 H9 N3 O2 (M-H)− 154.062 6 154.061 2 −2.28 Cordyceps sinensis 4 0.764 glutamic acid C5 H9 N O4 (M-H)− 146.045 7 146.044 9 1.02 Gynostemma pentaphyllum (Thunb.) Makino 5 13.632 GA17① C20 H26 O7 (M-H)− 377.161 6 377.161 9 −2.18 Semen Persicae 6 3.714 GA19 C20 H26 O6 (M+COOH)− 407.171 9 407.171 7 0.02 Semen Persicae 7 13.632 GA119 C19 H24 O5 (M+COOH)− 377.161 6 377.161 9 −2.48 Semen Persicae 8 5.209 prunasin① C14 H17 N O6 (M+COOH)− 340.102 9 340.102 3 0.40 Semen Persicae 9 11.060 prehispanolone① C20 H30 O3 (M-H)− 317.211 5 317.210 9 2.19 Schisandra chinensis Fructus 10 14.158 schisandrone C21 H24 O5 (M-H)− 355.156 4 355.156 6 −2.79 Schisandra chinensis Fructus 注：“①”表示正、负离子模式下都已鉴别出。 -
本研究首次运用UHPLC-Q-TOF/MS对扶正化瘀胶囊入血成分进行分析，该方法效率高、稳定性好、灵敏度高，能快速检测出含量较低的化学成分，优于其他方法。利用该技术快速初步鉴别出扶正化瘀胶囊血清供试品共49个化学成分，推测其可能为扶正化瘀胶囊发挥药效的物质基础。已鉴别出的化学成分主要集中在丹参、冬虫夏草，符合中药复方“君臣佐使”的配伍原则。为进一步探究其作用机制，拟进一步从 49 种入血成分筛选出抗肝纤维化的体内、外活性测试，期望筛选出具有抗肝纤维化的活性单体。该研究进一步将相应物质的色谱峰明确化，为扶正化瘀胶囊的深入研究奠定了良好基础。
Rapid identification of chemical constituents in serum and plasma of Fuzheng Huayu capsules by UHPLC-TOF/MS
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摘要:
目的 本研究运用超高效液相色谱-高分辨飞行时间质谱(UHPLC-Q-TOF/MS)联用技术鉴别扶正化瘀胶囊入血成分。 方法 色谱分离采用ACQUITY UPLCHSS T3 （2.1 mm×100 mm，1.8 μm）；流动相0.1%甲酸水溶液（A）−0.1%甲酸乙腈溶液（B），梯度洗脱条件：0~3 min，2%B；3~18 min，2%~50%B；18~22 min，50%~95%B；22~25 min，95%B。平衡时间为10 min，流速为0.4 ml/min，分析时间为25 min。质谱定性电喷雾离子源采用在正、负离子模式扫描，采集范围从100~1 100 m/z。 结果 在血清样品中一次性鉴别出49个成分，其中正、负离子模式下均有响应的有4个。 结论 本研究较全面地阐明了扶正化瘀胶囊的入血成分，丰富了扶正化瘀胶囊的科学内涵，为该复方的深入研究奠定了基础。 Abstract:Objective To identify the blood components of Fuzheng Huayu capsule by ultra performance liquid chromatography-high resolution time-of-flight mass spectrometry (UHPLC-Q-TOF/MS). Methods ACQUITY UPLCHSS T3 (2.1 mm × 100 mm, 1.8 μm) was used to chromatographic separation; mobile phase was 0.1% formic acid aqueous solution (A) −0.1% formic acid acetonitrile solution (B). The gradient elution conditions included: 0−3 min, 2% B; 3−18 min, 2%−50% B; 18−22 min, 50%−95% B; 22−25 min, 95% B. The equilibration time was 10 min, the flow rate was 0.40 ml/min, and the analysis time was 25 min. The mass spectrometry was characterized by electrospray ionization by a positive-negative ion mode scan with a range of 100-1 100 m/z. Results 49 components were identified in the serum samples at one time, of which 4 were positive and negative ion modes. Conclusion The blood components of Fuzheng Huayu capsule were clarified by this method, which enriched the scientific connotation of Fuzheng Huayu capsule, and laid the foundation for the in-depth study of the compound. -
溃疡性结肠炎（ulceractive colitis, UC）属于炎症性肠病的一种，有着较高的发病率，其特征为损伤性炎症，近年来有关其病因及发病机制的研究受到广泛关注，但至今仍不明确[1]。对于溃疡性结肠炎的治疗目前多采用手术、抗感染、糖皮质激素及免疫抑制剂等治疗，但上述治疗手段均为对症治疗，且药物长期使用的不良反应很容易造成疾病复发[2]。因此，探究溃疡性结肠炎的发病机制，将为今后治疗药物的研发提供理论基础。
Metrnl（Meteorin-like）是近年来新发现的神经营养因子，也叫Cometin, Subfatin或是IL-39[3-4]。 Jorgensen等[4]在2012年将Metrnl描述为类似于Meteorin（Metrn）的神经营养因子。Metrnl基因开放阅读框包含4个外显子，由936个碱基对编码311个氨基酸。Metrnl蛋白包含45个N端信号肽序列，切除信号肽后的266个氨基酸构成分子量约为30 000的成熟蛋白分子，整个蛋白分子没有穿膜区域，是一种分泌蛋白。到目前为止，关于Metrnl功能的研究较少，我们前期针对该蛋白相关研究确认Metrnl为一种新的细胞因子，阐明了Metrnl通过PPARγ信号通路介导胰岛素的增敏作用的重要机制[5]。 Jorgensen等[4]报道了Metrnl在神经突触生长和成神经细胞迁移中的神经营养活性。Watanabe等[6]报道，Metrnl是潜伏过程（Latent process，LP）基因，可用于细胞分化和神经突触延伸。脂肪组织Metrnl能促进脂肪细胞分化、改善代谢、抑制炎症从而调节脂肪功能，对抗肥胖引起的胰岛素抵抗[7]。通过检测Metrnl在各种组织中的表达，我们发现Metrnl在人和小鼠胃肠组织中，特别是在肠上皮细胞中都高度表达，并发现肠上皮Metrnl敲除后可以通过抑制肠上皮细胞的自噬而加重溃疡性结肠炎，提示 Metrnl是溃疡性结肠炎的治疗靶点[8]。
肠道微环境形成了良好的微生物群栖息地，肠道微生物群被认为是人体的重要器官，越来越多的研究将这种微生物环境与胃肠道疾病联系起来。肠道菌群在溃疡性结肠炎中起着重要作用，如在无菌状态下，无法制备出某些小鼠结肠炎模型（如IL-10缺陷型小鼠等）[9-10]。也有研究报道，在治疗溃疡性结肠炎患者时，联合使用抗生素也显示出了较好疗效[11]。此外，与健康人群相比，溃疡性结肠炎患者的肠道菌群组成也发生了显著变化[12]。但由于人类肠道菌群的复杂性和多样性，目前尚未清楚某些特定菌属与溃疡性结肠炎发病机制的关系。
因此，本研究聚焦溃疡性结肠炎，从肠道微生态角度出发，探究肠上皮Metrnl对于溃疡性结肠炎的作用以及对肠道菌群调节机制的影响。
1. 材料与方法
1.1 动物、试剂和仪器
雄性C57小鼠（8周龄，20只，16~20 g），上海西普尔-必凯实验动物有限公司（生产许可证号：SCXK(沪)2013-0016）。Villin-cre小鼠[B6.Cg-Tg(Vil1in-cre)1000Gum/J，021504]，2只，16~20 g，美国JAX公司（北京澄天生物科技有限公司代理），生产许可证号：SYXK（京）2018-0016），用于产生肠上皮细胞特异性Metrnl基因敲除小鼠（Metrnl(-/-)）。所有小鼠饲养于相对洁净环境下，使用独立通风系统（individual ventilated cages, IVC）动物房，温度恒定（22~26 ℃），室内明暗交替12 h（08:00至20:00照明），相对湿度为40%~70%，笼内维持正压20~25 Pa，每小时换气60~70次。所有实验动物的使用，都经过海军军医大学动物管理机构的同意和认证，符合实验动物饲养及相关管理规定。所有动物实验均按照美国国家卫生研究院实验动物的护理和使用指南进行，并得到海军军医大学动物伦理委员会的批准。IVC系统购自上海鸣励实验室科技发展有限公司。TRIzol试剂（15596026），美国Invitrogen公司；葡聚糖硫酸钠盐（dextran sodium sulfate，DSS），MFCD00081551，分子量36 000~50 000，美国MP公司，引物，生工生物工程有限公司；包埋机（JB- L5，德国徕卡有限公司）；切片机（RM2126，德国徕卡有限公司）；RT-PCR仪器（ABI 7500系统，美国赛默飞公司）；粪便DNA提取试剂盒（QIAamp Fast DNA Stool Mini Kit，Qiagen, Hilden, 德国）；紫外微量分光光度计（NanoDrop 2000，Thermo Scientific, 美国）；DNA凝胶回收试剂盒（AxyPrep DNA GelExtraction Kit，Axygen Biosciences, 美国）；微型荧光计（QuantiFluor-ST，Promega, 美国）；测序仪（Illumina MiSeq，Illumina, 美国）。
1.2 肠上皮细胞特异性Metrnl基因敲除小鼠的制备
首先按照本课题组已报道的方法[5]制备Metrnlloxp/loxp小鼠。根据报道的Metrnl(-/-)小鼠的繁殖策略[13]，即将Metrnlloxp/loxp小鼠与购买的Villin-Cre小鼠进行交配，产下后代小鼠基因型为Metrnlloxp/wtVillin-Cre。将Metrnlloxp/wtVillin-Cre小鼠和Metrnlloxp/loxp小鼠交配，产生下一代Metrnlloxp/loxpVillin-Cre小鼠。继续与Metrnlloxp/loxp交配，产下的后代，经基因型鉴定分别为Metrnlloxp/loxpVillin-Cre（Metrnl(-/-)）和Metrnlloxp/loxp（Metrnl(+/+)）。
1.3 RT-PCR定量肠道组织Metrnl mRNA表达
按照本课题组已报道的方法[3]，使用TRIzol试剂从肠道组织中提取总RNA，并使用ABI 7500系统进行RT-PCR。最终的20 μl反应混合物包括10 μl SYBR Green，2 μl cDNA模板和1 μl引物。通过重复反应确定平均阈值循环（Ct），将靶基因表达标准化为GAPDH，并使用ΔΔCT方法获得定量测量结果。Metrnl上游引物（F）CTGGAGCAGGGAGGCTTATTT，下游引物（R）GGACAACAAAGTCACTGGTACAG；GAPDH上游引物（F）GTATGACTCCACTCACGGCAAA，下游引物（R）GGTCTCGCTCCTGGAAGATG。
1.4 DSS诱导肠炎模型制备
雄性C57小鼠（8周龄）于实验室适应2周后，按照本课题组已报道的方法进行模型制备[7]，将DSS溶于水中，分别至终浓度为3%和1%，让小鼠自由饮用。
小鼠溃疡性结肠炎疾病程度评分，按照我们之前已报道的的评分标准进行评分[8]，对体重下降程度、大便性状、血便情况共3部分分别进行评分，然后进行加和，计算总分数。具体评分标准如下（表1）。
表 1 小鼠溃疡性结肠炎疾病程度评分表疾病评分 体重下降 (%) 大便性状 大便潜血 0 <1 正常 阴性 1 ≥1-5 - + 2 ≥5-10 软 ++ 3 ≥10-15 - +++ 4 ≥15 腹泻 ++++ 注：“-” 无此性状；“+” 潜血程度。 1.5 结肠长度检测及HE染色
小鼠处死后，取整个结肠部位，测量长度进行比较。然后将结肠下段部位组织用4％多聚甲醛固定，石蜡包埋，切片机切至4 μm的切片，按照之前的实验方法[14]，进行HE染色，染色后在光学显微镜下观察炎症细胞浸润情况，组织损伤情况并拍照记录。
1.6 肠道菌群测定
使用16S核糖体RNA基因测序技术检测肠道菌群。为了进行样品收集和DNA提取，从实验小鼠中收集粪便样品，并在取样后3h内将其冷冻在−80°C下。使用QIAamp Fast DNA Stool Mini Kit进行DNA提取。使用NanoDrop 2000测量细菌DNA的浓度。然后，将16S核糖体RNA基因测序用于检测细菌DNA。基因的V3-V4区域使用FastPfu聚合酶通过条形码索引引物（338F和806R）进行PCR扩增。然后通过AxyPrep DNA GelExtraction Kit，凝胶提取纯化扩增子，并使用QuantiFluor-ST进行定量。将纯化的扩增子以等摩尔浓度合并，并使用Illumina MiSeq仪器进行末端配对测序。
1.7 微生物宏基因组学分析
16S rRNA测序数据由Quantitative Insights Into Microbial Ecology平台（V.1.9.1）处理，并进行了MegaBLAST搜索，将生物分类单位的读数（OTU）与国家生物技术信息中心16S rRNA数据库中的参考序列比对。按照文献报道的方法[15]进行宏基因组学分析，从16S rRNA序列推算肠道微生物组的基因组，并且对每个样品的基因含量进行了预测。
1.8 统计分析
本实验结果数据以（
$\bar x $ ±s）表示，使用SPSS18.0软件进行统计分析。多组以上比较采用单因素方差分析（One-way ANOVA），各组与正常对照组比较采用Dunnett t检验法，两组比较采用独立样本t检验。以P<0.05为差异具有统计学意义。2. 结果
2.1 Metrnl(-/-)小鼠未表现结肠炎症状
我们构建了肠上皮细胞特异性Metrnl基因敲除（Metrnl(-/-)）小鼠，并检测了Metrnl mRNA在大肠和小肠组织中的表达。结果表明，Metrnl(-/-)小鼠中Metrnl mRNA的表达在结肠和小肠组织中极低（图1A）。 HE结肠切片显示Metrnl(-/-)和Metrnl(+/+)小鼠之间均无组织损伤和炎症细胞浸润（图1B）。以上结果表明，肠上皮细胞特异性Metrnl基因敲除后不会诱发溃疡性结肠炎。
2.2 溃疡性结肠炎模型制备条件的选择
在建立DSS诱发的溃疡性结肠炎模型之前，为了选择最佳的观察时间和DSS给药浓度，我们分别选择3％DSS和1％DSS进行造模，并观察了不同DSS浓度下C57小鼠的存活时间。结果显示，在3％DSS组的第6天，出现了小鼠死亡；直至给药10 d，全部小鼠死亡（图2A）。在1％DSS组中，未观察到小鼠死亡。与对照组相比，3％DSS组的小鼠体重在第5天时显著性降低（P<0.05），而1％DSS组的体重并无显著改变（图2B）。同样，与对照组相比，3％DSS组小鼠DAI增加（P<0.05），结肠长度显著性缩短（P<0.05），而1％DSS组在疾病活动指数、结肠长度方面均无明显变化（图2C-D）。 组织形态学方面，3％DSS组表现出结肠炎表型，具有明显的组织损伤，而对照组并无明显变化（图2E）。因此，我们选择3％DSS和5 d的给药时间作为后续实验条件。
2.3 Metrnl缺乏对DSS诱导的溃疡性结肠炎的影响
给予Metrnl(-/-)和Metrnl(+/+)小鼠3％DSS后，两组小鼠均表现出溃疡性结肠炎症状，其特征为持续的体重减轻、疾病活动指数增加、血性腹泻、结肠长度缩短以及结肠炎症（图3）。在此过程中，在给药后第5天时，与Metrnl(+/+)小鼠体重减轻（−8.27± 1.32）%相比，Metrnl(-/-)小鼠的体重减轻（−14.92±1.05）%，具有统计学差异（P<0.05，图3A）；与Metrnl(+/+)小鼠的疾病活动指数（6.00±1.63）相比，Metrnl(-/-)小鼠显著增加至（9.67±1.38）（P<0.05，图3B）；与Metrnl(+/+)小鼠结肠长度（7.08±0.89 cm）相比，Metrnl(-/-)小鼠结肠更短（5.77±0.58 cm）（P<0.05）（图3D）；为了排除上述差异不是由小鼠摄入不同量的3%DSS引起的，我们还检测了两组小鼠的饮水量。结果显示两组小鼠饮水量之间并无显着差异（图3C）。
图 3 Metrnl敲除后对DSS诱导的溃疡性结肠炎的影响A. 体重；B.疾病评分；C.水摄入量；D.结肠长度；E.结肠组织HE染色P<0.05，与DSS-Metrnl(+/+)组比较。2.4 Metrnl缺乏对DSS诱导的溃疡性结肠炎小鼠的菌群平衡的影响
我们通过高通量16S rRNA基因测序，检测了Metrnl对DSS诱导的溃疡性结肠炎小鼠模型中肠道菌群的影响。应用Chao1 丰度估计量（chao1 richness estimator），香农多样性指数（shannon diversity index），辛普森多样性指数（simpson diversity index）三种指标评价各组小鼠中菌群的Alpha多样性（图4A-C）。结果显示，在未进行DSS造模之前，Metrnl(-/-)和Metrnl(+/+)小鼠的Alpha多样性并无显著差异；而进行3%DSS造模后，Metrnl(-/-)和Metrnl(+/+)小鼠出现了差异，其中Metrnl(-/-)小鼠多样性显著下降（图4A-C）。主成分分析显示，在给予3%DSS造模后的Metrnl(-/-)和Metrnl(+/+)小鼠之间微生物的组成显著不同（图4D）。检测小鼠粪便微生物组成，结果显示，在“门”这一层面，给予3%DSS后拟杆菌门（Bacteroidetes）、厚壁菌门（Firmicutes）和变形杆菌门（Proteobacteria）在Metrnl(-/-)和Metrnl(+/+)小鼠间存在显著的不同（图4E）。在Metrnl(-/-)小鼠中，Bacteroidetes和Proteobacteria显著降低，而Firmicutes显著升高。在“纲”这一层面，发现给予DSS后，Metrnl(-/-)和Metrnl(+/+)小鼠间拟杆菌纲（Bacteroidia）和梭菌纲（Clostridia）具有显著差异。值得注意的是，拟杆菌纲（Bacteroidia）属于拟杆菌门（Bacteroidetes）；梭菌纲（Clostridia）属于厚壁菌门（Firmicutes）（图4F）。为了进一步探究影响给予DSS后造成Metrnl(-/-)和Metrnl(+/+)小鼠间状态的原因，我们又在“目”层面进行了检测，结果显示（图4G），拟杆菌目（Bacteroidales），属于杆菌纲（Bacteroidia）；梭菌目（Clostridiales），属于梭菌纲（Clostridia）发生了显著改变。
图 4 肠上皮Metrnl 敲除对DSS诱导的溃疡性结肠炎小鼠肠道菌群动态平衡的影响A. Chao1丰度估计量；B.香农多样性指数；C.辛普森多样性指数；D.主成分分析；E.门水平上的丰度；F.纲水平上的丰度；G.目水平上的丰度P<0.05，与DSS-Metrnl(+/+)组比较。3. 讨论
本研究用DSS诱导溃疡性结肠炎小鼠模型并从对肠道微生物影响的角度出发，探究肠上皮Metrnl特异性敲除对于肠道菌群调节的影响以及对溃疡性结肠炎的作用。发现Metrnl在溃疡性结肠炎小鼠模型中具有保护的功能，该效应可能是Metrnl通过对肠道菌群的调节所致。 近期有一篇关于Metrnl改善克罗恩氏病（CD）的报道，该研究表明肠系膜脂肪组织与肠道存在交互作用，发现小鼠在给予Metrnl后，可通过激活STAT5/PPARγ信号通路，从而达到促进脂肪细胞分化来减轻肠系膜脂肪组织病变的作用[16]。该研究表明Metrnl确实可以影响炎症性肠病的发生发展。除此以外，我们进一步证实了，肠上皮特异性Metrnl敲除后可以加重DSS诱导的溃疡性结肠炎，并且该作用是通过抑制AMPK-mTOR-p70S6K通路，下调了肠上皮细胞自噬水平产生的[7]。
肠道微环境形成了合适的微生物群栖息地，已证明会影响多种消化系统疾病的发生[17]。肠道菌群稳态的紊乱已被广泛认为与炎症性肠病的发病机制和进展密切相关[8]。肠道菌群主要有三种功能，分别是代谢作用，保护作用和营养作用[18-19]。正常人肠道中在“门”这一层面，主要有四类微生物群，包括拟杆菌门（Bacteroidetes）、厚壁菌门（Firmicutes）、放线菌门（Actinobacteria）和变形杆菌门（Proteobacteria）[20-21]。
溃疡性结肠炎的主要特征是有益细菌的减少。拟杆菌门（Bacteroidetes）是革兰阴性厌氧细菌，构成了哺乳动物胃肠道中主要微生物群[22]。目前认为，拟杆菌门可以通过免疫调节和维持体内平衡而对宿主发挥有益作用。据报道，拟杆菌门可以通过分泌多糖A（polysaccharide A, PSA）来增强抗炎因子IL-10的mRNA表达[23-24]。本研究结果显示出类似趋势，在给予3%DSS进行溃疡性结肠炎造模后，Metrnl(-/-)小鼠症状更加严重，与Metrnl(+/+)小鼠相比，其拟杆菌门的成分显著下降。然而，拟杆菌门在溃疡性结肠炎中并不完全有益。有报道显示，拟杆菌门可以侵入肠道组织并引起个别患者的肠道损伤[25]。因此针对该类菌属的作用还有待进一步验证。除此以外，由于SCFA具有增强肠壁屏障和免疫系统的作用，从而有助于抵抗病原体，因此产生SCFA的菌群目前认为对人体是有益的，例如Faecalibacterium prausnitzii，Roseburia或Eubacterium[26-28]。放线菌门（Actinobacteria）中的双歧杆菌属（Bifidobacterium）也是有益菌群[29-30]。然而，在该属中发现了有争议的结果，因为有研究报道显示，与对照组相比，溃疡性结肠炎患者的Bifidobacterium增加了[31- 32]，其原因可能是疾病程度的造成的。因此，需要进一步的研究来阐明该有益菌群在溃疡性结肠炎中的作用。
相反的，目前很多研究显示菌群在溃疡性结肠炎中显著增加，如变形杆菌门（Proteobacteria）下的黏附侵入性大肠杆菌属（adherent-invasive Escherichia coli）和巴斯德杆菌属（Pasteurellaceae），厚壁菌门（Firmicutes）下的韦荣氏球菌属（Veillonellaceae）和瘤胃球菌属（Ruminococcus gnavus），梭杆菌属（Fusobacterium）。我们的研究结果也显示出类似趋势，在给予DSS后，与Metrnl(+/+)小鼠相比，Metrnl(-/-)小鼠的厚壁菌的成分显著上升。除此以外，以下菌属也被认为具有潜在致病性，如大肠杆菌属（Escherichia），沙门菌属（Salmonella），耶尔森菌属（Yersinia），脱硫弧菌属（Desulfovibrio），幽门螺杆菌属（Helicobacter），弧菌属（Vibrio）[31, 33-36]。目前报道较多的是黏附侵入性大肠杆菌，此种细菌能够黏附并穿过肠道黏液屏障，侵入肠道上皮层，促进TNFα分泌和炎症的发生[37-38]。本研究表明，肠上皮特异性Metrnl敲除后，在3%DSS诱导的溃疡性结肠炎模型中，导致肠道菌群动态平衡的进一步紊乱，表明恢复菌群动态平衡对于治疗溃疡性结肠炎至关重要。
需要注意的是，大量研究表明，目前并没有明确具体的哪一种微生物群对人体是有益的，因为每个人的菌群特征都不同。一般而言，只有相对平衡的微生物群，才能最佳地维持人体的代谢和免疫功能以及预防疾病的发展。在健康的肠道中，病原菌和共生菌群可以共存而不会出现问题。但是，这种平衡的任何紊乱都会导致营养不良，从而改变微生物与宿主之间的相互作用[39]。尽管目前普遍认为溃疡性结肠炎中肠环境平衡的破坏是显著发生的，但是造成肠道平衡紊乱的生物学机制的仍然未知，并且不清楚这种紊乱究竟是造成溃疡性结肠炎的原因还是结果。
本研究仍存在不足。首先，肠道微生态对溃疡性结肠炎的保护作用的详细机制仍未探究清楚，特别是肠道中存在的主要4类微生物群（拟杆菌，厚壁菌，放线菌，变形杆菌）对溃疡性结肠炎的作用还有待证实。其次，肠上皮特异性Metrnl敲除后通过调节肠道菌群的组成，从而加重3%DSS诱导的溃疡性结肠炎的作用证据仍不十分充分，需要今后在进一步的研究中加以阐明。
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图 1 空白血清（A）、混合对照品溶液（B）、含药血清（C）在正离子模式下的总离子流图
1. 丹参素；2. 丹酚酸B；3. 二氢丹参酮I；4. 丹酚酸A；5. 五味子乙素；6. 苦杏仁苷；7. 腺苷；8. 五味子醇甲；9. 绞股蓝皂苷XLIX；10. 山柰酚
表 1 入血化学成分的正离子模式鉴别结果
编号 保留时间 (t/min) 化合物名称 分子式 M+X 理论分子量(m/z) 实际分子量(m/z) 误差(ppm) 归属药材 1 10.157 dihydrokaranone C15 H22 O (M+H)+ 219.174 1 219.174 3 2.01 Salvia miltiorrhiza Bge. 2 10.453 dihydrotanshinone I C18 H14 O3 (M+H)+ 279.101 0 279.101 4 0.29 Salvia miltiorrhiza Bge. 3 12.031 salvianonol C18 H20 O4 (M+H)+ 301.141 7 301.141 3 5.72 Salvia miltiorrhiza Bge. 4 10.009 isocryptotanshinone II C19 H20 O3 (M+H)+ 297.148 1 297.148 1 1.49 Salvia miltiorrhiza Bge. 5 11.078 sugiol C20 H28 O2 (M+H)+ 301.216 0 301.216 0 0.78 Salvia miltiorrhiza Bge. 6 11.636 salviol C20 H30 O2 (M+H)+ 303.231 9 303.232 2 −0.13 Salvia miltiorrhiza Bge. 7 12.762 dihydrovalepotriate C22 H32 O8 (M+H)+ 425.216 3 425.215 1 2.87 Salvia miltiorrhiza Bge. 8 7.232 4-methyl salicylaldehyde C8 H8 O2 (M+H)+ 137.059 9 137.059 8 0.05 Salvia miltiorrhiza Bge. 9 1.168 nicotinamide C6 H6 N2 O (M+H)+ 123.055 1 123.054 1 2.14 Cordyceps sinensis 10 0.642 histidine① C6 H9 N3 O2 (M+H)+ 156.075 8 156.076 8 1.52 Cordyceps sinensis 11 1.061 valine C5 H11 N O2 (M+H)+ 118.086 2 118.086 2 0.61 Cordyceps sinensis 12 1.357 adenosine C10 H13 N5 O4 (M+H)+ 268.104 2 268.104 4 −0.54 Cordyceps sinensis 13 0.765 arginine C6 H14 N4 O2 (M+H)+ 175.118 7 175.118 8 2.03 Cordyceps sinensis 14 0.634 lysine C6 H14 N2 O2 (M+H)+ 147.112 9 147.112 8 −0.45 Cordyceps sinensis 15 9.590 cis-9-octadecenoic acid C18 H34 O2 (M+NH4)+ 300.289 2 300.289 4 1.78 Cordyceps sinensis 16 9.360 octadecanoic acid C18 H36 O2 (M+NH4)+ 302.305 4 302.305 1 −0.76 Cordyceps sinensis 17 1.751 leucine C6 H13 N O2 (M+H)+ 132.102 1 132.101 3 −1.57 Cordyceps sinensis 18 1.361 pedatisectine B C5 H5 N5 (M+H)+ 136.062 2 136.061 8 1.02 Cordyceps sinensis 19 8.259 linoleic acid C18 H32 O2 (M+NH4)+ 298.274 0 298.274 1 0.9 Cordyceps sinensis 20 1.102 methionine C5 H11 N O2 S (M+H)+ 150.058 5 150.058 4 −0.61 Cordyceps sinensis 21 10.979 linoleic acid C18 H32 O2 (M+NH4)+ 298.273 9 298.274 1 2.57 Semen Persicae 22 4.726 glucose C6 H12 O6 (M+H)+ 181.070 5 181.070 8 0.95 Semen Persicae 23 9.648 GA17① C20 H26 O7 (M+Na)+ 401.158 3 401.159 2 −2.24 Semen Persicae 24 5.194 prunasin① C14 H17 N O6 (M+Na)+ 318.095 6 318.096 0 −1.94 Semen Persicae 25 9.623 gomisin R C22 H24 O7 (M+H)+ 401.158 5 401.159 1 2.71 Schisandra chinensis Fructus 26 11.168 2-(2-phenyl cyclohexyloxy) ethanol C14 H20 O2 (M+Na)+ 243.135 3 243.135 8 1.78 Schisandra chinensis Fructus 27 9.911 deangeloylgomisin F C23 H28 O8 (M+Na)+ 455.168 9 455.168 2 −0.19 Schisandra chinensis Fructus 28 12.524 schisandrin B C23 H28 O6 (M+Na)+ 423.177 5 423.177 6 1.88 Schisandra chinensis Fructus 29 8.333 gomisin Q C24 H32 O8 (M+Na)+ 471.198 1 471.198 2 1.56 Schisandra chinensis Fructus 30 9.130 (±)-gomisin m1 C22 H26 O6 (M+Na)+ 409.161 8 409.161 8 0.64 Schisandra chinensis Fructus 31 11.973 1,1alpha,4,5,6,7,7alpha,7beta-octahydro-1,1,7,7alpha-tetramethyl-2h-cyclopropa (alpha)-naphthalen-2-one C14 H22 O (M+H)+ 207.174 9 207.174 2 −2.61 Schisandra chinensis Fructus 32 6.870 1-phenyl-1,3-butanedion C10 H10 O2 (M+H)+ 163.075 5 163.075 8 −1.40 Schisandra chinensis Fructus 33 10.839 geranyl acetate C12 H20 O2 (M+H)+ 197.153 8 197.153 5 1.07 Schisandra chinensis Fructus 34 11.110 tigloylgomisin P C28 H34 O9 (M+NH4)+ 532.254 3 532.253 8 0.22 Schisandra chinensis Fructus 35 7.322 citronellyl acetate C12 H22 O2 (M+NH4)+ 216.195 3 216.195 4 2.48 Schisandra chinensis Fructus 36 0.814 gama-octalactone C8 H14 O2 (M+NH4)+ 160.133 0 160.132 9 0.27 Schisandra chinensis Fructus 37 9.607 gomisin D C28 H34 O10 (M+Na)+ 553.204 2 553.203 9 0.61 Schisandra chinensis Fructus 38 10.248 1,1α,2,4,6,7,7α,7β-octahydro-1,1,7,7α-tetra-methyl-5h-cyclopropa (α)-naphthalen-5-one C15 H22 O (M+H)+ 219.173 7 219.174 3 2.92 Schisandra chinensis Fructus 39 9.935 phenyl-2-propanone C9 H10 O (M+H)+ 135.080 2 135.080 2 1.81 Schisandra chinensis Fructus 40 11.834 prehispanolone① C20 H30 O3 (M+H)+ 319.226 3 319.225 7 2.56 Schisandra chinensis Fructus 41 9.919 psilostachyin C15 H20 O5 (M+H)+ 281.137 9 281.138 4 1.67 Schisandra chinensis Fructus 42 11.324 santlic acid C15 H22 O2 (M+H)+ 235.168 3 235.170 5 0.58 Schisandra chinensis Fructus 43 7.355 gomisin A C23 H28 O7 (M+H)+ 417.190 6 417.190 3 0.23 Schisandra chinensis Fructus 注：“①”表示正、负离子模式下都已鉴别出。 
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表 2 入血化学成分的负离子模式鉴别结果
编号 保留时间 (t/min) 化合物名称 分子式 M-X 理论分子量(m/z) 实际分子量(m/z) 误差(ppm) 归属药材 1 6.795 tanshindiol C C18 H16 O5 (M+COOH)− 357.098 9 357.099 7 −1.34 Salvia miltiorrhiza Bge. 2 13.681 paramiltioic acid C19 H24 O5 (M+COOH)− 377.161 6 377.161 9 −1.84 Salvia miltiorrhiza Bge. 3 0.812 histidine① C6 H9 N3 O2 (M-H)− 154.062 6 154.061 2 −2.28 Cordyceps sinensis 4 0.764 glutamic acid C5 H9 N O4 (M-H)− 146.045 7 146.044 9 1.02 Gynostemma pentaphyllum (Thunb.) Makino 5 13.632 GA17① C20 H26 O7 (M-H)− 377.161 6 377.161 9 −2.18 Semen Persicae 6 3.714 GA19 C20 H26 O6 (M+COOH)− 407.171 9 407.171 7 0.02 Semen Persicae 7 13.632 GA119 C19 H24 O5 (M+COOH)− 377.161 6 377.161 9 −2.48 Semen Persicae 8 5.209 prunasin① C14 H17 N O6 (M+COOH)− 340.102 9 340.102 3 0.40 Semen Persicae 9 11.060 prehispanolone① C20 H30 O3 (M-H)− 317.211 5 317.210 9 2.19 Schisandra chinensis Fructus 10 14.158 schisandrone C21 H24 O5 (M-H)− 355.156 4 355.156 6 −2.79 Schisandra chinensis Fructus 注：“①”表示正、负离子模式下都已鉴别出。
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