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用反相高效液相色谱法同时测定复方酮康唑软膏中三组分的含量

吴博 王铁柱 拜年 刘冰 宋洪涛

潘青杰, 张文文, 王芳. 羁押人员应用抗感染药物所致的158例不良反应分析[J]. 药学实践与服务, 2021, 39(1): 90-93. doi: 10.12206/j.issn.1006-0111.202004087
引用本文: 吴博, 王铁柱, 拜年, 刘冰, 宋洪涛. 用反相高效液相色谱法同时测定复方酮康唑软膏中三组分的含量[J]. 药学实践与服务, 2021, 39(2): 152-156. doi: 10.12206/j.issn.1006-0111.202006053
PAN Qingjie, ZHANG Wenwen, WANG Fang. Analysis on 158 detainees with adverse reactions due to anti-infective drugs[J]. Journal of Pharmaceutical Practice and Service, 2021, 39(1): 90-93. doi: 10.12206/j.issn.1006-0111.202004087
Citation: WU Bo, WANG Tiezhu, BAI Nian, LIU Bing, SONG Hongtao. Determination of three constituents in compound ketoconazole ointment by RP-HPLC[J]. Journal of Pharmaceutical Practice and Service, 2021, 39(2): 152-156. doi: 10.12206/j.issn.1006-0111.202006053

用反相高效液相色谱法同时测定复方酮康唑软膏中三组分的含量

doi: 10.12206/j.issn.1006-0111.202006053
详细信息
    作者简介:

    吴 博,硕士研究生,研究方向:药物新剂型和制剂新技术,Email:384336299@qq.com

    通讯作者: 宋洪涛,博士生导师,主任药师,研究方向:药物新剂型和制剂新技术,Email:sohoto@vip.163.com
  • 中图分类号: R917

Determination of three constituents in compound ketoconazole ointment by RP-HPLC

  • 摘要:   目的  建立同时测定复方酮康唑软膏中酮康唑、莫匹罗星和糠酸莫米松含量的方法。  方法  采用反相高效液相色谱法,色谱柱为Intersil ODS-3(250 mm×4.6 mm,5 μm),流动相为甲醇-pH5.5磷酸盐缓冲液(65∶35),柱温45 ℃,流速1.0 ml/min,检测波长248 nm。  结果  方法学验证表明,酮康唑、莫匹罗星和糠酸莫米松3种成分线性关系良好(r≥0.9995),日内日间精密度均小于3.0%,回收率在90%~108%之间,稳定性和重复性的RSD均小于3.0%,符合方法学要求。按照新建立的方法测定了3个批次样品中三组分的含量,结果符合要求。  结论  该方法简便可靠,可为复方酮康唑软膏的质量控制提供依据,也为其质量标准研究奠定了基础。
  • 超多孔水凝胶(SPF)是一种三维结构的亲水性高分子聚合网格,在水中能够溶胀但不溶解,且因其具有良好的生物相容及生物可降解性,被广泛应用于医学、药学等领域。与传统水凝胶相比,超多孔水凝胶通过致孔剂、模板等方法调整孔隙率,从而改变溶胀速率以及释药速率[1-3]。胰岛素等生物大分子类药物不仅体内稳定性差、易被酶解、生物半衰期短、不易透过生理屏障,故现有给药方式多以注射为主,患者依从性差[4]。有研究显示[5],超多孔水凝胶承载胰岛素灌胃后可以显著降低大鼠血糖:给药2 h后血糖显著下降,4~6 h降至最低,但12 h即回至最初血糖的80%,说明该制剂起效快但持续时间短,血糖波动大,需频繁给药,患者依从性差。上述情况,结合胃肠道对胰岛素的灭活等原因,本实验拟合成具有缓释作用的聚(丙烯酸-丙烯酰胺)/O-羧甲基壳聚糖[P(AA-co-AM)/O-CMC]互穿网络聚合物超多孔水凝胶(SPH-IPN),以期通过皮下给药包载胰岛素的SPH-IPN后,实现长效、减小血糖波动的目的。

    丙烯酰胺(AM)、丙烯酸(AA)、N,N′-亚甲基-双丙烯酸胺(Bis)、过硫酸铵(APS)、N,N,N′,N′-四甲基乙二胺(TEMED)均购自上海阿拉丁生化科技股份有限公司;泊洛沙姆127(PF127,北京化工厂);O-羧甲基壳聚糖(O-CMC,大连美仑生物技术有限公司);戊二醛(GA,上海阿拉丁生化科技股份有限公司);姜黄素(宝鸡国康生物科技有限公司);牛胰岛素(上海源叶生物有限公司);十二烷基硫酸钠(SDS)、乙二胺四乙酸二钠(EDTA)、碳酸氢钠、盐酸、乙醇、甲醇、乙酸乙酯、氢氧化钠均为分析纯,实验用水为去离子水。

    85-2型恒温磁力搅拌器(上海司乐仪器有限公司);恒温水浴锅(余姚市东方电工仪器厂);透析袋(Viskase,美国);Nicolet iS50傅里叶变换红外光谱仪(Thermo,美国);AVANCE III 400核磁共振谱仪(Bruker,德国);FE28型pH计(Mettler Toledo,美国);Waters UPLC:二元溶剂管理系统、在线脱气机、自动进样器、PDA检测器(Waters公司,美国);TTL-DC型多功能氮吹仪(北京同泰联科技发展有限公司);SHA-B双功能恒温水浴振荡器(常州金坛良友仪器有限公司)。

    雄性SD大鼠,体重范围(220±20)g,合格证号:SCXK(京)2017-0002,购自北京斯贝福实验动物科技有限公司,饲养于北京中医药大学动物房。

    依次向西林瓶中加入50% AM和AA溶液,以10 mol/L NaOH调节pH至5.0。随后再加入2.5% Bis溶液、10% PF 127溶液、20%APS溶液和50 μl 16.7% TEMED溶液,磁力搅拌混匀。室温放置15 min后,逐滴加入 6% O-CMC溶液,使溶液中O-CMC/单体比(w/w)为0.144,迅速加入NaHCO3粉末,搅拌约20 s使其产生气泡,将其置于40 ℃水浴加热5 min,室温固化30 min,即得半互穿网络水凝胶(semi-IPN)。将所得semi-IPN置于GA/O-CMC比(w/w)为2∶10的GA溶液(用0.2 mol/L的盐酸溶液调节pH至1.0)中至将其吸干,室温放置1 h,得粗P(AA-co-AM)/O-CMC超多孔水凝胶(SPH-IPN)。将SPH-IPN置于0.1 mol/L盐酸溶液中,透析5 d,无水乙醇中脱水透析2 d,30 ℃烘干至恒重,干燥密闭保存,即得纯化后的SPH-IPN。

    将样品充分干燥,KBr压片法制样,使用傅里叶变换红外光谱仪测定500~4 000 cm−1波数的SPH-IPN的IR谱。将样品置于氧化锆样品管(A=4 mm),转速5 000 Hz,固体碳谱测定。

    取干燥的SPH-IPN,室温下浸于过量水中(pH 7.0),于不同时间点用筛网取出SPH-IPN,吸去表面残余水后称重,根据以下公式计算SPH-IPN在不同时间点的溶胀比(QS):

    $$ {Q_{\rm{S}}} = \frac{{{W_{\rm{S}}} - {W_{\rm{d}}}}}{{{W_{\rm{d}}}}} $$

    其中,WS为溶胀后SPH-IPN质量(g);Wd为干SPH-IPN质量(g)。

    采用乙醇替代法测定SPH-IPN的孔隙率[6]。取干燥的SPH-IPN,置无水乙醇中浸泡12 h,取出后吸去表面残余乙醇,称重,根据以下公式计算孔隙率:

    $$ {\text{孔隙率}}=\frac{{M}_{2}-{M}_{1}}{\rho V}\times 100\;\text{%}$$

    其中,M1为干SPH-IPN质量(g);M2为乙醇浸泡后的SPH-IPN质量(g);ρ为乙醇密度(g/cm),V为SPH-IPN体积(cm3,以游标卡尺测量长方体SPH-IPN的长、宽、高后计算而得)。

    2.5.1   载胰岛素SPH-IPN的制备

    取胰岛素15 mg,精密称定,置10 ml量瓶中,加0.1 mol/L pH 7.4 PBS溶解并定容至刻度,得1.5 mg/ml的胰岛素溶液。称取50 mg SPH-IPN置装有10 ml胰岛素溶液的西林瓶中,37 ℃温浴放置2 h,取出,置烘箱内,30 ℃恒温干燥。

    2.5.2   载药量的测定

    取胰岛素SPH-IPN适量,研磨粉碎,取20 mg,精密称定,置10 ml量瓶中,加入0.1 mol/L pH 7.4 PBS,定容至刻度。37 ℃温浴2 h,超声10 min,精密量取上清液20 μl注入HPLC仪,记录色谱图,计算胰岛素含量,并根据以下公式计算载药量:

    $$ {\text{载药量}}(\%)=\frac{cV}{M}\times 100$$

    其中,c为测得胰岛素的浓度(mg/ml),V为量瓶体积(ml),M为SPH-IPN的质量(mg)。

    2.6.1   不同方法载药SPH-IPN的制备

    按“2.5.1”项下方法制备载胰岛素SPH-IPN,采用冷冻干燥法将其冻干即得含胰岛素的冻干SPH-IPN。称取空白凝胶200 mg置于1.5 mg/ml的胰岛素溶液37 ℃中溶胀2 h,备用,即得含胰岛素的预溶胀SPH-IPN。

    2.6.2   糖尿病大鼠模型的建立

    给大鼠喂食高脂饲料(88.8%基础饲料、1%胆固醇、10%猪油和 0.2%胆盐[7])喂养4周,动物自由进食和饮水,每周记录体重。于喂养的第28天晚禁食,在第29天一次性腹腔注射链脲佐菌素(STZ)35 mg/kg,将一次性注射STZ 3 d后大鼠空腹血糖≥11.1 mmol/L或随机血糖≥16.7 mmol/L作为成模标准[8]。对照组大鼠则腹腔注射无菌生理盐水(0.3 ml/100 g)。注意测血糖前应禁食12 h,空腹测血糖。造模期间要防止感染,注意消毒。未造模成功的大鼠再次注射STZ35 mg/kg,3 d后测血糖验证是否造模成功。

    2.6.3   分组、给药及血糖测定

    取糖尿病大鼠12只,按随机数字表分为2组,即模型1组和模型2组;取正常大鼠12只,按随机数字表分为2组,即正常1组和正常2组。模型组1组和正常1组皮下埋植含胰岛素的预溶胀SPH-IPN,模型2组和正常2组皮下埋植含胰岛素的冻干SPH-IPN。给药后分别于1、2、4、6、8、10、12、24、28、32、36、48、60、72 h不同时间间隔大鼠尾部取血0.02 ml,用血糖仪测定血糖值,考察不同时间血糖值的变化情况。

    3.1.1   傅立叶变换红外光谱(FTIR)

    图1为SPH-IPN的FTIR图。在1 651 cm−1处有-COOH的伸缩振动峰,且1 615 cm−1附近无AA和AM的C=C双键吸收峰,说明已聚合成P(AA-co-AM),SPH-IPN中存在P(AA-co-AM),图中3 335和2 922 cm-1处分别为-O-H和-C-H的伸缩振动峰;1 604和1 416 cm−1处分别为羧酸盐-COO-的反对称伸缩振动峰和对称伸缩振动峰;1 086、1 044和1 171 cm−1处分别为O-CMC中糖环羟基-CH-OH、一级羟基-CH2-OH和醚基C-O-C中的C-O伸缩振动峰。以上结果表明SPH-IPN中存在P(AA-co-AM),还存在的一些杂峰可能是还有一些未反应单体未被除尽。

    图  1  SPH-IPN的傅立叶变换红外光谱
    3.1.2   核磁共振(13C-NMR)

    图2为SPH-IPN的13C-NMR图。图中41.926×10−6为P(AA-co-AM)上主链碳原子的化学位移峰;179.499处为羧基碳原子的化学位移峰,说明结构中含有羧基官能团,AA与AM已聚合形成P(AA-co-AM)。

    图  2  SPH-IPN的核磁共振碳谱

    由于制得的水凝胶未找到合适的溶液将其溶解,因此在测定核磁共振图谱时,采用的是固体核磁技术[9]

    综合红外和碳谱结果可知,通过该方法可聚合形成P(AA-co-AM)结构,而该结构又是超多孔水凝胶SPH-IPN的主要结构,由此可说明已成功聚合SPH-IPN。

    图3为不同温度介质中SPH-IPN的溶胀曲线,可见随着温度升高,SPH-IPN的溶胀速率加快,平衡溶胀比增大,原因是温度较高时相互缠绕的聚合物链松开,破坏分子间的氢键,增加链运动,水分子在凝胶骨架内外的扩散速率加快,从而促进了聚合物的溶胀[10]

    图  3  不同温度下SPH-IPN的溶胀性

    表1为SPH-IPN孔隙率测定结果,所制SPH-IPN超多孔水凝胶空隙分布均匀。除此之外,与传统水凝胶相比[11],孔隙率高,更利于药物的释放。

    表  1  SPH-IPN的孔隙率测定结果
    干重M1
    (m/g)
    湿重M2
    (m/g)
    乙醇密度
    (g/cm3)
    体积
    (V/cm3)
    孔隙率
    (%)
    平均值
    (%)
    RSD
    (%)
    0.54250.63270.8160.1385.0381.633.88
    0.57510.67790.8160.1678.74
    0.56280.66210.8160.1581.13
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    37 ℃时SPH-IPN溶胀比较大,温度过高易引起胰岛素变性,故选择37 ℃温度载药,胰岛素的载药量试验结果见表2

    表  2  SPH-IPN对胰岛素的载药量
    试验组载药量(w/w,%)平均值(w/w,%)RSD(%)
    13.133.191.88
    23.25
    33.20
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    图4是含胰岛素的预溶胀SPH-IPN和冻干SPH-IPN对糖尿病大鼠和正常大鼠降糖作用的比较。图中预溶胀模型组在10 h时血糖值才有所降低,最低值为10 h的16.8 mmol/L,之后血糖又开始慢慢升高;预溶胀正常大鼠组在给药4 h后血糖开始降低,到24 h时血糖达到7.3 mmol/L,之后维持平稳状态;冻干模型组在包埋1 h后血糖便开始下降,血糖值降到6.7 mmol/L,在24 h后血糖开始慢慢升高,冻干正常大鼠组在1 h后血糖降至5.3 mmol/L,之后虽有起伏,但也一直在正常范围内。说明冻干凝胶的降糖作用较预溶胀组好,冻干凝胶在1~24 h时间段内的降糖作用较平稳。

    图  4  载胰岛素SPH-IPN的降糖作用

    本实验选用了能够迅速聚合的水溶性原料AA、AM为聚合反应单体;以APS/TEMED为引发体系;PF127为泡沫稳定剂,使产生的泡沫稳定时间更长;NaHCO3为起泡剂;O-CMC在合成过程中作为增稠剂,维持合适的起泡速率,使产生的气泡均匀、稳定,不致产生的气泡过快逸散[12]。采用溶液聚合法制备了含semi-IPN的水凝胶。因为该聚合反应在反应过程中会产生大量热量,这对泡沫的稳定极为有利,因此在常温条件下便能进行聚合反应,条件温和。以pH 1.0的GA溶液交联O-CMC时,可避免过度溶胀对孔隙结构的破坏,且pH 1.0时GA的交联能力较好。除此之外,相较于参考文献[5],本实验中O-CMC/单体比较高,当O-CMC/单体比为0.144时,虽然可形成具有大量相互贯通孔隙的聚合物,但会导致其溶胀速率减慢,溶胀比降低,从而影响载药量和释药速率。随着溶胀速率减慢,药物溶出速率也相应减慢;随着溶胀比的降低,吸收的药物溶液减少,载药量随之降低。本实验提高O-CMC/单体的目的是希望通过减慢SPH-IPN的溶胀速率,从而尝试制备缓释制剂。

    水凝胶的载药方法通常有2种:一是将药物与单体溶液混合,随着单体聚合、交联将药物包埋于水凝胶中[13];另一种方法为吸附载药,即凝胶在被载药液中溶胀,将载药水凝胶干燥,实现药物包埋[14]。姜黄素属于脂溶性药物,课题组前期研究结果表明,0.5%的SDS对姜黄素有一定的增溶效果;0.1 mol/L pH 7.4 PBS中SPH-IPN的溶胀比较大,对胰岛素具有一定的增溶作用,故分别选用这两种溶剂配制胰岛素溶液。

    文献[5]表明,超多孔水凝胶载药后的释药性能与O-CMC的含量、pH、离子强度、温度等多个因素有关,同时也有可能与载药SPH-IPN的制备过程有关。

    笔者曾用SPH-IPN包载姜黄素,并开展探索性实验。结果发现20、40、60目不同粒径的凝胶累积释放率不同,前13 h三者的累积释放率均几乎一样(接近0),13 h后累积释放率逐渐增加,以40目凝胶的效果最佳,48 h后达到6.00%,明显高于其他组,但其释放速度慢,见图5。灌胃给予载姜黄素SPH-IPN后,部分大鼠排泄物中可见载姜黄素SPH-IPN,说明SPH-IPN在体内溶胀速率很慢;而载姜黄素SPH-IPN组和姜黄素原药组,灌胃后大鼠眼眶血中均未检出姜黄素,也进一步体现SPH-IPN未促进姜黄素的吸收。

    图  5  不同粒径载姜黄素SPH-IPN的释药情况

    将载胰岛素SPH-IPN予灌胃给药溶胀很慢,降糖效果极不明显,为延长SPH-IPN溶胀时间,最终考虑将其进行皮下包埋给药。

    载胰岛素SPH-IPN皮下包埋给药发现,载胰岛素冻干SPH-IPN组的降糖效果优于载胰岛素溶胀SPH-IPN组,表明载药SPH-IPN的释放性能除与溶胀比有关外,其制备过程也会一定程度影响被载药物的疗效,与文献[5]报道一致。实验中将冻干组和溶胀组均进行包埋,均可延长溶胀时间,但冻干SPH-IPN组的降糖效果优,皮下包埋2 h后表现出明显的降糖作用,相比溶胀组而言,起效时间快(8 h左右)且持续时间长,24 h之内均具有良好的降糖作用。提示我们在制备载药SPH-IPN的过程中应该时刻关注被载药物的活性及稳定性,应在适当的条件下对药物进行包载以提高药物疗效,同时也说明载胰岛素冻干SPH-IPN可作为控释制剂,实现调节大鼠血糖的目的。结合实验结果分析可知,SPH-IPN能够增强药物的稳定性,提高生物利用度,比较适合作为蛋白质药物给药载体。

    文献研究发现,胰岛素经皮给药具有不错的疗效,与皮下给药效果几无差异,且依从性好,成为最新、有效、方便的给药方式。Norduist等[15]将微针贴剂用于胰岛素给药,结果发现,血浆胰岛素浓度变化与传统的皮下注射并无太大差异,但微针贴剂能极大地提高实验大鼠的依从性。无痛中空微针皮内胰岛素给药系统已获得 FDA批准,进入II期临床,相关产品有以色列纳米通道技术公司采用MEMS技术开发的中空微针器具,其中包括用于无痛释放胰岛素薄片与胰岛素微型泵相结合。Liu等[16]将可溶性材料透明质酸制备成负载胰岛素的微针阵列。在体实验发现,负载胰岛素的微针能够在1 h内完全溶解,携带的胰岛素快速释放入体内。

    与上述研究及应用相比,本实验的载胰岛素SPH-IPN,释放药物无需微型泵,皮下包埋给药可以24 h内保持平稳、正常的血糖浓度,适合作为一日一次给药的控释制剂。为了提高患者的依从性,进一步研究将载胰岛素SPH-IPN制备为微针阵列的形式,以期得到一种方便、快捷、安全的胰岛素缓释递药系统。

  • 图  1  莫匹罗星、糠酸莫米松和酮康唑的紫外图谱

    A.莫匹罗星;B.糠酸莫米松;C.酮康唑

    图  2  复方酮康唑软膏的RP-HPLC色谱图

    A.莫匹罗星对照品溶液;B.糠酸莫米松对照品溶液;C.酮康唑对照品溶液;D.混合对照品溶液;E.供试品溶液;F.阴性溶液 1.莫匹罗星;2.糠酸莫米松;3.酮康唑

    表  1  复方酮康唑软膏中主药的线性方程

    药名线性方程r线性范围(µg/ml)
    莫匹罗星A=2.295C+10.200.999540.0~400.0
    糠酸莫米松A=28.240C+1.8710.99952.0~20.0
    酮康唑A=12.280C+27.940.999540.0~400.0
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    表  2  复方酮康唑软膏中三种主药的重复性试验结果

    药物含量(µg/ml)测得量(µg/ml)平均含量(µg/ml)RSD(%)
    莫匹罗星200.00203.60204.301.51
    200.00204.90
    200.00201.70
    200.00208.80
    200.00206.40
    200.00200.40
    糠酸莫米松10.0010.109.991.23
    10.009.91
    10.0010.06
    10.0010.10
    10.009.99
    10.009.79
    酮康唑200.00203.30203.600.65
    200.00203.90
    200.00202.60
    200.00204.90
    200.00205.00
    200.00201.60
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    表  3  复方酮康唑软膏中三种主药的稳定性试验结果

    主药时间(t/h)RSD
    (%)
    024681224
    莫匹罗星100.0099.94100.0099.9499.8199.1298.490.68
    糠酸莫米松100.0099.69100.49100.38100.3899.6598.370.74
    酮康唑100.0099.90100.06100.02100.0499.64100.000.15
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    表  4  复方酮康唑软膏中三种主药回收率试验结果(n=3)

    药名加入量(µg/ml)测得量(µg/ml)回收率(%)平均回收率(%)RSD
    (%)
    莫匹罗星160.00154.4096.5097.500.59
    160.00156.5997.87
    160.00155.8797.42
    200.00195.7697.88
    200.00193.3596.67
    200.00194.5597.28
    240.00235.7098.21
    240.00234.9297.88
    240.00234.7497.81
    糠酸莫米松8.007.7396.6297.990.79
    8.007.8498.00
    8.007.8397.91
    10.009.8898.80
    10.009.7197.10
    10.009.7897.80
    12.0011.8899.00
    12.0011.8598.75
    12.0011.7597.92
    酮康唑160.00153.6396.0297.620.74
    160.00156.3997.74
    160.00155.8497.40
    200.00195.7297.86
    200.00194.0697.03
    200.00195.4497.72
    240.00236.4698.52
    240.00235.6098.17
    240.00235.3898.08
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    表  5  3批次样品含量测定结果(n=3,%)

    样品批号酮康唑莫匹罗星糠酸莫米松
    2019041199.0399.20101.4
    20190415106.399.76101.6
    20190408100.6100.7100.7
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出版历程
  • 收稿日期:  2020-06-20
  • 修回日期:  2021-03-13
  • 网络出版日期:  2021-03-31
  • 刊出日期:  2021-03-25

用反相高效液相色谱法同时测定复方酮康唑软膏中三组分的含量

doi: 10.12206/j.issn.1006-0111.202006053
    作者简介:

    吴 博,硕士研究生,研究方向:药物新剂型和制剂新技术,Email:384336299@qq.com

    通讯作者: 宋洪涛,博士生导师,主任药师,研究方向:药物新剂型和制剂新技术,Email:sohoto@vip.163.com
  • 中图分类号: R917

摘要:   目的  建立同时测定复方酮康唑软膏中酮康唑、莫匹罗星和糠酸莫米松含量的方法。  方法  采用反相高效液相色谱法,色谱柱为Intersil ODS-3(250 mm×4.6 mm,5 μm),流动相为甲醇-pH5.5磷酸盐缓冲液(65∶35),柱温45 ℃,流速1.0 ml/min,检测波长248 nm。  结果  方法学验证表明,酮康唑、莫匹罗星和糠酸莫米松3种成分线性关系良好(r≥0.9995),日内日间精密度均小于3.0%,回收率在90%~108%之间,稳定性和重复性的RSD均小于3.0%,符合方法学要求。按照新建立的方法测定了3个批次样品中三组分的含量,结果符合要求。  结论  该方法简便可靠,可为复方酮康唑软膏的质量控制提供依据,也为其质量标准研究奠定了基础。

English Abstract

潘青杰, 张文文, 王芳. 羁押人员应用抗感染药物所致的158例不良反应分析[J]. 药学实践与服务, 2021, 39(1): 90-93. doi: 10.12206/j.issn.1006-0111.202004087
引用本文: 吴博, 王铁柱, 拜年, 刘冰, 宋洪涛. 用反相高效液相色谱法同时测定复方酮康唑软膏中三组分的含量[J]. 药学实践与服务, 2021, 39(2): 152-156. doi: 10.12206/j.issn.1006-0111.202006053
PAN Qingjie, ZHANG Wenwen, WANG Fang. Analysis on 158 detainees with adverse reactions due to anti-infective drugs[J]. Journal of Pharmaceutical Practice and Service, 2021, 39(1): 90-93. doi: 10.12206/j.issn.1006-0111.202004087
Citation: WU Bo, WANG Tiezhu, BAI Nian, LIU Bing, SONG Hongtao. Determination of three constituents in compound ketoconazole ointment by RP-HPLC[J]. Journal of Pharmaceutical Practice and Service, 2021, 39(2): 152-156. doi: 10.12206/j.issn.1006-0111.202006053
  • 市售复方酮康唑乳膏包含酮康唑、硫酸新霉素和丙酸氯倍他索,是治疗浅部真菌感染的常用药物。其中,酮康唑是最常用的抗真菌药物,具有价格低、抗菌谱广、抗真菌活性强等优势。但细菌对硫酸新霉素易产生耐药性,可导致患者反复感染,难以根治,且丙酸氯倍他索不适合12岁以下儿童使用,副作用较多,可产生红斑、灼热、瘙痒等刺激症状,长期大面积用药可导致高血糖等[1-5]。针对上述问题,为改善市售产品的有效性和安全性,本课题组将硫酸新霉素替换为抗菌作用更强的莫匹罗星,将丙酸氯倍他索替换为副作用较少的糠酸莫米松,再结合酮康唑,制备新型复方酮康唑软膏,以提高患者的用药依从性[6-8]

    本研究采用反相高效液相色谱法同时测定复方酮康唑软膏中酮康唑、莫匹罗星和糠酸莫米松3种药效成分的含量,该方法目前未见有文献报道。本法简便,灵敏,分离度好,准确性高,可以为该制剂的质量标准研究提供依据。

    • AL204型电子天平(梅特勒-托利多仪器有限公司);TU-1901型紫外可见分光光度计(北京普析通用仪器有限责任公司);Agilent 1200型高效液相色谱仪(美国Agilent公司);Starter 2C型实验室pH计(奥豪斯仪器有限公司);KQ-800KDE型超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司)。

    • 酮康唑对照品(批号:100294-201203,含量99.4%)、莫匹罗星对照品(批号:130568-200501,含量94.2%)、糠酸莫米松对照品(批号:100930-201201,含量99.9%)均购自中国食品药品检定研究院;酮康唑原料药(批号:20130405)、莫匹罗星原料药(批号:20130301)、糠酸莫米松原料药(批号:20130228)均购自武汉鑫佳公司;聚乙二醇400和聚乙二醇3350(中国医药对外贸易公司)。

    • 分别取酮康唑、莫匹罗星和糠酸莫米松适量,精密称定,加流动相制备成适宜浓度的溶液,以相应的溶剂为空白溶液,在190~400 nm波长范围内进行紫外扫描,结果见图1

      图  1  莫匹罗星、糠酸莫米松和酮康唑的紫外图谱

      图1可见,莫匹罗星在220 nm处具有最大吸收波长,糠酸莫米松在248 nm处具有最大吸收波长,酮康唑在203 nm和245.5 nm具有最大吸收波长,三者在220 nm与248 nm之间均有吸收,因在供试品中酮康唑和莫匹罗星的浓度均是糠酸莫米松的20倍,糠酸莫米松在220 nm处响应值较小,为保证3种药物能同时测定,确定酮康唑、莫匹罗星和糠酸莫米松的检测波长为248 nm。

    • 色谱柱:Intersil ODS-3柱(250 mm×4.6 mm,5 µm),流动相为甲醇-pH5.5磷酸盐缓冲液(65∶35),柱温45 ℃,流速1.0 ml/min,检测波长248 nm,进样量10 µl。理论塔板数以各组分峰计,均不低于5000,各色谱峰的分离度良好。

    • 酮康唑对照品溶液:取酮康唑20 mg,精密称定,置10 ml量瓶中,加入适量65%甲醇,超声使其完全溶解,加65%甲醇稀释至刻度,摇匀,得到酮康唑的标准储备液,4 ℃低温避光保存。精密吸取酮康唑的标准储备液1 ml,置于10 ml量瓶中,加65%甲醇稀释至刻度,摇匀,即得。

      莫匹罗星对照品溶液:取莫匹罗星20 mg,精密称定,置10 ml量瓶中,加入适量65%甲醇,超声使其完全溶解,加65%甲醇稀释至刻度,摇匀,得到莫匹罗星的标准储备液,4 ℃低温避光保存。精密吸取莫匹罗星的标准储备液1 ml,置于10 ml量瓶中,加65%甲醇稀释至刻度,摇匀,即得。

      糠酸莫米松对照品溶液:取糠酸莫米松10 mg,精密称定,置100 ml量瓶中,加入适量65%甲醇,超声使其完全溶解,加65%甲醇稀释至刻度,摇匀,得到糠酸莫米松的标准储备液,4 ℃低温避光保存。精密吸取糠酸莫米松的标准储备液1 ml,置于10 ml量瓶中,加65%甲醇稀释至刻度,摇匀,即得。

      混合对照品溶液:取酮康唑、莫匹罗星和糠酸莫米松的标准储备液各1 ml,置10 ml量瓶中,加65%甲醇稀释至刻度,摇匀,即得。

    • 取复方酮康唑软膏0.5 g,精密称定,置于50 ml的容量瓶中,加65%甲醇适量,超声溶解,加65%甲醇稀释至刻度,摇匀,即得供试品溶液。

    • 取空白软膏基质0.5 g,精密称定,置于50 ml的容量瓶中,加65%甲醇适量,超声溶解,加65%甲醇稀释至刻度,摇匀,即得阴性对照溶液。

    • 取上述对照品溶液、供试品溶液和阴性对照溶液,用0.22 μm微孔滤膜过滤,弃去初滤液,续滤液分别按照上述色谱条件进样,记录色谱图及相关参数。莫匹罗星的保留时间为5.075 min,理论塔板数为9196,对称因子0.81;糠酸莫米松的保留时间为18.413 min,理论塔板数为11859,对称因子0.88;酮康唑的保留时间为23.318 min,理论塔板数为12291,对称因子0.89,空白基质对莫匹罗星、糠酸莫米松和酮康唑的测定无干扰,方法专属性好。对照品溶液、供试品溶液及阴性对照溶液色谱见图2

      图  2  复方酮康唑软膏的RP-HPLC色谱图

    • 分别精密吸取酮康唑、莫匹罗星和糠酸莫米松标准储备液各0.2、0.4、0.8、1.0、1.2、1.4、1.6、2 ml,置10 ml量瓶中,用65%甲醇稀释至刻度,摇匀,0.22 μm微孔滤膜过滤,弃去初滤液,续滤液按上述色谱条件分别进样10 µl,记录色谱图峰面积。以峰面积A对浓度C (µg/ml)进行线性回归,结果见表1

      表 1  复方酮康唑软膏中主药的线性方程

      药名线性方程r线性范围(µg/ml)
      莫匹罗星A=2.295C+10.200.999540.0~400.0
      糠酸莫米松A=28.240C+1.8710.99952.0~20.0
      酮康唑A=12.280C+27.940.999540.0~400.0
    • 分别精密量取同一批复方酮康唑软膏6份,每份约0.5 g,按“2.3.2”项下操作,测定,计算酮康唑、莫匹罗星和糠酸莫米松含量。结果见表2,结果表明该方法重复性良好。

      表 2  复方酮康唑软膏中三种主药的重复性试验结果

      药物含量(µg/ml)测得量(µg/ml)平均含量(µg/ml)RSD(%)
      莫匹罗星200.00203.60204.301.51
      200.00204.90
      200.00201.70
      200.00208.80
      200.00206.40
      200.00200.40
      糠酸莫米松10.0010.109.991.23
      10.009.91
      10.0010.06
      10.0010.10
      10.009.99
      10.009.79
      酮康唑200.00203.30203.600.65
      200.00203.90
      200.00202.60
      200.00204.90
      200.00205.00
      200.00201.60
    • 取供试品溶液,室温放置,分别于0、2、4、6、8、12、24 h进样10 µl测定,计算不同时间点莫匹罗星、糠酸莫米松和酮康唑的含量,结果见表3

      表 3  复方酮康唑软膏中三种主药的稳定性试验结果

      主药时间(t/h)RSD
      (%)
      024681224
      莫匹罗星100.0099.94100.0099.9499.8199.1298.490.68
      糠酸莫米松100.0099.69100.49100.38100.3899.6598.370.74
      酮康唑100.0099.90100.06100.02100.0499.64100.000.15
    • 分别精密称取莫匹罗星8、10、12 mg,糠酸莫米松0.4、0.5、0.6 mg,酮康唑8、10、12 mg(相当于标示量的80%、100%、120%),精密称定,分别置于0.5 g的空白基质中,加适量流动相溶液,超声10 min使溶解,置于50 ml量瓶中,加流动相溶液稀释至刻度,摇匀,得低、中、高不同浓度的溶液,每个浓度各3份。用0.22 µm微孔滤膜过滤,弃去初滤液,续滤液按上述色谱条件分别进样,记录色谱图峰面积。根据回归方程计算出相应浓度和含量,并计算回收率、平均回收率及RSD。结果见表4

      表 4  复方酮康唑软膏中三种主药回收率试验结果(n=3)

      药名加入量(µg/ml)测得量(µg/ml)回收率(%)平均回收率(%)RSD
      (%)
      莫匹罗星160.00154.4096.5097.500.59
      160.00156.5997.87
      160.00155.8797.42
      200.00195.7697.88
      200.00193.3596.67
      200.00194.5597.28
      240.00235.7098.21
      240.00234.9297.88
      240.00234.7497.81
      糠酸莫米松8.007.7396.6297.990.79
      8.007.8498.00
      8.007.8397.91
      10.009.8898.80
      10.009.7197.10
      10.009.7897.80
      12.0011.8899.00
      12.0011.8598.75
      12.0011.7597.92
      酮康唑160.00153.6396.0297.620.74
      160.00156.3997.74
      160.00155.8497.40
      200.00195.7297.86
      200.00194.0697.03
      200.00195.4497.72
      240.00236.4698.52
      240.00235.6098.17
      240.00235.3898.08
    • 取3批样品,依法测定,结果见表5

      表 5  3批次样品含量测定结果(n=3,%)

      样品批号酮康唑莫匹罗星糠酸莫米松
      2019041199.0399.20101.4
      20190415106.399.76101.6
      20190408100.6100.7100.7
    • 本研究根据软膏剂的特性,选择了提取效率较高,操作简便的超声提取法进行样品前处理,对溶剂种类、溶剂体积、提取时间进行考察,最终选择65%甲醇50 ml,超声提取10 min,该提取方法可有效的除去样品中的杂质,让测定的专属性更高。

    • 对于流动相的选择,本实验尝试以甲醇-0.6%醋酸铵溶液作为流动相[9-12],结果基线非常不稳定,这可能是由于醋酸铵的紫外吸收所造成。以甲醇-水、乙腈-水,甲醇-磷酸二氢钠溶液和甲醇-乙腈-水等作为流动相[13-15],使用磷酸二氢钠溶液分离效果及峰形较好,有机相甲醇的比例应控制在一定范围,甲醇低于50%则酮康唑峰保留时间过长;流动相的酸度对酮康唑(弱碱性)和莫匹罗星(弱酸性)[16]的峰形及保留时间亦有影响,用磷酸将磷酸二氢钠的pH值调节到4.5、5.0、5.5和6.0。结果表明,当流动相的pH值为5.5时,莫匹罗星、糠酸莫米松和酮康唑的三组峰值均具有较好的分离度,并且无前延和拖尾现象。对于检测波长的选择,酮康唑、莫匹罗星和糠酸莫米松在220 nm与248 nm均有吸收,因在供试品中酮康唑和莫匹罗星的浓度均是糠酸莫米松的20倍,为了让这三种药物能同时测定,提高检测的灵敏度,确定最佳检测波长为248 nm。对于色谱柱的选择,本研究考察了岛津、安捷伦和沃特世等品牌的色谱柱,最终选择了岛津Intersil ODS-3柱,三种待测成分在该柱上分离度好,峰形佳,所以确定为最佳色谱柱。

    • 3个批次的复方酮康唑软膏均为实验室自制,从测定结果可以看出,不同批次的样品中酮康唑、莫匹罗星和糠酸莫米松的含量有一定波动,这提示我们在进行中试放大生产时,要充分考虑各因素的影响,保证制剂中主要成分的含量稳定,同时对软膏剂的长期稳定性也需要进行考察。

参考文献 (16)

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