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麻黄碱是中药麻黄的主要有效成分,但它也可以引起中枢神经系统毒副作用。麻黄碱属于小分子生物碱,能够通过血脑屏障对神经细胞产生直接毒性作用 [1-4]。然而,有关麻黄碱神经毒性的作用机制并不完全清楚。脑源性神经营养因子(BDNF)已被证实参与学习、记忆等多种中枢神经系统的活动[5]。突触后致密蛋白是突触后膜胞质面聚集的一层均匀而致密的蛋白,其中PSD95是主要成分之一[6]。而synapsin1是维持突触前膜功能的重要成分之一[7]。BNDF、PSD95和synapsin1与神经元结构完整性和功能的完备性密切相关。本研究以PC12细胞为研究对象,考察麻黄碱的细胞毒性,同时检测BDNF、PSD95和synapsin1表达水平的变化,初步探讨麻黄碱引起细胞毒性的可能机制。
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盐酸麻黄碱(批号:D03150702,赤峰艾克制药科技有限公司);BDNF抗体(批号:ab108319)、PSD95抗体(批号:ab18258)、synapsin1抗体(批号:ab64581)均购自英国Abcam公司。
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PC12细胞购自中科院细胞库。
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电子天平(德国Sartorious公司);孵育箱(Thermo公司);酶标仪(BioTek公司);Western blot设备(美国Bio-Rad公司)。
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将培养瓶里的PC12细胞接种到96孔板上,每孔接种6000个细胞,用含1%FBS(胎牛血清)的RPMI 1640培养12 h后,吸弃原培养基,加入RPMI 1640基础培养基,1 h后分别加入不同浓度的麻黄碱,使其终浓度分别为0.25、0.5、1、2、4、8、16、20 mmol,继续培养24 h后,加入终浓度为0.5 mg/ml的MTT,继续孵育4 h,吸弃培养液,每孔加入150 μl的DMSO(二甲基亚砜),轻微震荡10 min,在酶标仪检测570 nm处的光密度(OD)值。
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将培养瓶的PC12细胞接种到12孔板中,用含1%FBS的RPMI 1640培养12 h后,吸弃原培养基,加入RPMI 1640基础培养基1 h后分别加入不同浓度的麻黄碱,使其终浓度分别为10、500、1000 μmol,继续培养24 h后,在倒置显微镜下明场视野观察细胞形态变化。
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将6孔板每孔接种105个PC12细胞,用含1%FBS的RPMI1640培养12 h,换上基础培养基RPMI1640,1h后分别加入不同浓度的麻黄碱,其终浓度分别为1、10、100、500、1000 μmol,继续培养24 h后,迅速将培养基吸弃,置于−30℃冷冻数小时,然后在冰上每孔加相应量的RIPA(含1%磷酸酶抑制剂和1%蛋白酶抑制剂)裂解液,4℃震荡30 min,将细胞裂解液收集到相应离心管里,4℃低温高速(12000 r/min)离心10 min。取出上清,蛋白浓度检测(BCA)试剂盒测定蛋白浓度后,加入相应量的5×的上样缓冲液和适量的RIPA裂解液,95℃加热10 min制样。制胶上样,样品80 V电泳结束后,400 mA电流90 min转移至PVDF(聚偏氟乙烯膜)后,5%脱脂奶粉室温封闭2 h,按分子量切出相应条带,分别孵育相应一抗过夜,洗涤后室温孵育相应二抗2 h,漂洗后,增强化学发光(ECL)法显影。
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实验数据以
$ \bar x \pm s $ 表示。应用SPSS 20.0统计软件,采用单向方差分析法处理试验结果。首先进行Levene方差齐性检验,方差齐性且整体比较组间有显著性差异时,采用LSD法进行多重比较,方差分析不显著时不进行多重比较;若方差不齐,则作Welch检验,方差分析有显著性差异时,采用Dunnett’s T3法进行多重比较,方差分析不显著时不进行多重比较。 -
MTT结果如图1所示,麻黄碱在一定范围内对PC12细胞有一定的毒性,经拟合计算在PC12细胞中麻黄碱的IC25值为0.536 mmol,IC50值为2.8 mmol。
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PC12细胞形态学变化如图2所示,在20倍镜下观察,随着麻黄碱浓度的升高细胞数量与空白对照组相比逐渐减少,细胞突触数量也随之减少。1000 μmol浓度处理条件下,轴突长度显著减短,细胞体边缘模糊,细胞体积显著变小。
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图3结果显示,随着麻黄碱剂量的增加,PC12细胞中BDNF的蛋白表达量增加。当麻黄碱浓度为500 μmol时,BDNF的表达量约为空白对照组的1.58倍,有统计学差异(P<0.05);而当麻黄碱浓度高达 1000 μmol时,BNDF为对照组的1.91倍(P<0.001)。说明该浓度范围内麻黄碱可以浓度依赖性的引起PC12细胞中BDNF表达升高。
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图4结果显示,随着麻黄碱剂量的增加,PC12细胞中PSD95的表达增加。麻黄碱浓度为500 μmol时,PSD95的蛋白表达水平约为空白对照组的1.38倍,有统计学差异(P<0.05);而当麻黄碱浓度达到1000 μmol时,PSD95表达量约上升为对照组的1.52倍(P<0.001)。说明该浓度范围内麻黄碱可以浓度依赖性的引起PC12细胞中PSD95表达升高。
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图5结果显示,随着麻黄碱剂量的增加,PC12细胞中synapsin1的表达量有下降的趋势。其中,麻黄碱浓度为500 μmol时,synapsin1的蛋白表达水平约为空白对照组的0.65,具有统计学差异(P<0.05);而当麻黄碱浓度达到1000 μmol时,synapsin1表达量下降至对照组的0.53(P<0.001)。说明麻黄碱在该浓度范围内可以引起PC12细胞中synapsin1表达降低。
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麻黄历来被中医冠以“解表第一要药”,是治疗外感风寒表实证的重要中药,主要用于风寒感冒,胸闷喘咳,风水浮肿等,麻黄汤就是以麻黄为君药的治疗表寒实证的代表名方。然而前期研究发现,给予大鼠连续灌胃麻黄,可以造成大鼠不同脑区损伤,其中对额叶皮层影响较大,HE染色结果甚至观察到神经元凋亡早期的形态学改变 [8-9]。已经证实麻黄中对中枢神经系统有兴奋毒性作用的主要成分是麻黄碱。麻黄碱的神经毒性可能与升高兴奋性谷氨酸水平有关,过量的兴奋性谷氨酸能引起多巴胺神经末梢的破坏和额叶皮层、丘脑、边缘系统的神经变性。为了明确麻黄引起中枢神经系统毒性的机制,本研究中将麻黄碱单体作为研究对象,考察其在体外细胞模型中的毒性作用。
PC12细胞源于鼠嗜铬细胞瘤,在结构上和功能上与神经元有高度相似的地方,因其可重复性好,被广泛应用于中枢神经系统的研究。本研究首先考察了不同浓度麻黄碱对PC12细胞存活率的影响,确定了麻黄碱引起细胞毒性的浓度范围。在此基础上,分别考察不影响细胞存活率情况下(IC25值以下浓度)及显著影响细胞存活率情况下(IC25值以上浓度),麻黄碱对中枢神经系统中相关功能蛋白的影响。
BDNF是神经营养因子家族的肽生长因子的一员。在体实验发现,BDNF在大脑海马的CA1区可通过促进兴奋性突触的发育来增强突触强度。同时,BDNF可以在皮层神经元中增加介导中枢神经中快速兴奋性突触传递的AMPA受体的表达,提高动物兴奋性[10-13]。而外源性的BDNF则可以通过增强突触间的传递,增强海马神经元的兴奋性 [14]。以上研究表明,BDNF与神经细胞的兴奋性密切相关。PSD95定位于突触后膜,是高电子密度的半圆形区域形成的突触后致密区的主要组成部分之一。研究发现在海马神经元中过表达PSD95可以促进成熟谷氨酸能突触以及谷氨酸受体的活性 [6,15]。PSD95链接了兴奋性受体NMDAR(N-甲基-D-天冬氨酸受体)和下游信号分子,并且在神经元成熟以及突触的形成中发挥着重要作用[16]。尽管在多数神经退行性病变中,提高BDNF和PSD95的表达水平可以显著改善行为学,但是也有研究表明在生理状态下,神经元的过度激活会引起神经元的功能的减退甚至导致神经损伤。由于BDNF和PSD95与神经元兴奋性关系密切,在前期的行为学实验中,表明麻黄碱灌胃给药会引起大鼠自主活动的增加,并激活神经元,故我们在考察麻黄碱产生细胞毒性的机制时,检测了BDNF和PSD95的蛋白表达水平。结果显示,随着麻黄碱浓度的增加,BDNF和PSD95的表达水平浓度依赖性地升高,当浓度达到500 μmol时差异具统计学意义(P<0.05),说明麻黄碱可以引起体外神经细胞模型的兴奋状态。
与此同时,通过观察细胞形态变化,发现一定剂量的麻黄碱会引起PC12细胞突触数量下降和长度减短,说明麻黄碱会引起突触丢失。文献研究表明,synapsin1是突触的重要标志物,可以反应突触形态上的完整性和功能[7]。由此,我们在考察麻黄碱对PC12细胞形态影响的同时,采用Western blot检测了synapsin1的表达水平。梯度浓度麻黄碱处理PC12细胞后synapsin1的表达变化结果表明随着麻黄碱处理浓度的增加,synapsin1的表达水平降低,当浓度达到500 μmol时差异具统计学意义(P<0.05),说明麻黄碱有一定的细胞毒性的同时,也可以引起神经细胞的突触毒性,突触蛋白的丢失可能也是引起神经细胞毒性的原因之一。
综上所述,本实验结果表明麻黄碱可以对PC12细胞产生毒性。与正常细胞相比,麻黄碱处理组的细胞在形态学上发生了明显的变化,BDNF和PSD95等与兴奋性相关的蛋白表达出现了明显升高,而与突触功能有关的蛋白synapsin1表达出现了明显下降,说明麻黄碱产生中枢神经系统毒副作用的机制与BDNF、PSD95及synapsin1的表达变化有关。
Effects of ephedrine on the expression levels of BDNF, PSD95 and synapsin1 in PC12 cells
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摘要:
目的 考察麻黄碱对PC12细胞内的脑源性神经营养因子(BDNF)、突触后致密蛋白95(PSD95)和神经突触素1(synapsin1)表达水平的影响,探讨麻黄碱对PC12细胞毒性的作用机制。 方法 通过不同浓度的麻黄碱处理PC12细胞后,采用噻唑蓝试剂(MTT)法测定细胞存活率;采用倒置显微镜观察细胞的形态学变化;采用蛋白印迹(Western blot)法检测BDNF、PSD95和synapsin1的蛋白表达水平。 结果 麻黄碱呈浓度依赖性降低PC12细胞活力,其引起PC12细胞死亡的IC25和IC50分别为0.536 mmol和2.8 mmol。随着麻黄碱浓度的升高,PC12细胞体积变小,边界模糊,突触数减少,轴突长度减短;BDNF和PSD95的表达水平明显升高;synapsin1的表达水平有所降低。 结论 麻黄碱对PC12细胞的毒性作用机制可能与影响BDNF、PSD95和synapsin1的表达水平有关。 Abstract:Objective To investigate the effects of ephedrine on the expression levels of brain-derived neurotropic factor (BDNF) and postsynaptic density protein 95 (PSD95) and synapsin1 in PC12 cells, and to explore the mechanism of ephedrine cytotoxicity on PC12. Methods After PC12 cells were treated with different concentration of ephedrine, the cell survival rate was measured by the methylthiazolyldiphenyl-tetrazolium bromide (MTT) assay. The morphology changes of PC12 cells were observed by an inverted microscope. Western blot was used to detect the protein expression levels of BDNF, PSD95 and synapsin1 in PC12 cells. Results Ephedrine decreased the viability of PC12 cell in a concentration-dependent manner,with an IC25 and IC50 of 0.536 mmol and 2.8 mmol, respectively, for PC12 cell death. As ephedrine concentration increased, PC12 cells became smaller in size, with blurred boundary blurred, reduced synapses and shorter axon lengths. The expression levels of BDNF and PSD95 increased significantly. Meanwhile the expression level of synapsin1 decreased. Conclusion The mechanism of ephedrine cytotoxicity on PC12 may be related to the expression levels of BDNF, PSD95 and synapsin1. -
药品非无菌产品微生物限度检查中微生物计数法(后简称计数法)是药品检验的重要组成部分,是对能在有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的定量计数[1]。计数法检验流程概括为:取供试品根据其理化和生物学特性,采取适宜的方法制备供试液。倍比稀释,选取1~3个合适的稀释级(根据样品特性和污染情况)用平皿法、薄膜过滤法或MPN法做供试品检查。供试样品的制备过程中使样品充分溶解或分散,并有效降低或消除药品本身的抑菌性在检验过程中尤为重要,是得到准确的微生物计数检验结论的关键点。过去的研究主要集中在对计数法检验有影响的菌株选择和保存、培养基质量控制、操作环境控制及被检样品方法适用性研究,而对药品的前处理(即供试液的制备方法)尤其是中成药的前处理法研究甚少。据佘凡等报道[2-7],影响微生物限度检验误差因素分析中因前处理所产生误差在各因素中占比重较高。李超美等[8]曾组织同省9个药检所对同厂家、同批号中成药“香莲丸”做微生物限度验证,发现验证方法并不完全相同,以致验证结果不同,影响实验结果一致性评价。分析其主要原因是选择了不同的前处理方法,样品经前处理后是否完全溶解或分散,供试液中颗粒大小和沉降速度,取供试液时是振摇混匀还是取上清液、样品抑菌性是否被中和等因素直接影响微生物的回收率,致使各实验室有的采用常规法,有的采用培养基稀释法,有的采用薄膜过滤法才能使回收率达到药典规定的要求。
鉴于中成药微生物限度计数法前处理工作对提高中成药的检验质量影响较大,本文就中成药前处理关键影响因素和优化方法进行了系统的分析和综述。
1. 影响计数法前处理的因素分析
1.1 中成药溶解性分类
《中国药典》2020版与欧美药典[1,9,10]在样品供试液制备时(前处理)都根据药品的理化特性和生物学特性将药品分类。一般口服制剂除肠溶、结肠溶和膜剂供试品外基本分为三类:水溶性供试品、水不溶性非油脂类供试品、油脂类供试品。中成药配方复杂,成分多样,制法较西药特殊。如片剂中牛黄解毒片是由人工牛黄、雄黄、石膏、大黄、黄芩、桔梗、冰片、甘草8味药组成,制法是:以上八味,雄黄水飞成极细粉;大黄粉碎成细粉;人工牛黄、冰片研细;其余黄芩等四味加水煎煮二次,合并滤液浓缩成稠膏或干燥成干浸膏,加入大黄、雄黄粉末,制粒,干燥,再加入人工牛黄、冰片粉末,混匀,压制成片[11]。丸剂中防风通圣丸由防风、大黄、芒硝、栀子、滑石、白术、白芍、当归等17味中药组方。制法是以上十七味,滑石粉碎成极细粉;其余防风等十六味粉碎成细粉,过筛,混匀,用水制丸,干燥,用滑石粉包衣, 打光,干燥,即得。或以上十七味,粉碎成细粉,过筛,混匀,用水制丸,干燥,即得[11]。从以上两个中成药的配方、制法可以看出中成药是药材提取物与原粉的混合,雄黄、石膏是矿物质,冰片是植物提取物结晶,都不溶于水,其他生药原粉也不能完全溶于水。所以较难将其简单分成水溶性、不溶性非油脂类供试品、油脂类供试品。这是影响各实验室选择前处理方法制备样品最直接的因素。
1.2 缓冲液pH值
《中国药典》2020版和欧洲药典的缓冲液pH值范围基本相同[1,10],为pH7.0、pH7.2、pH6.8、pH7.6,供试液制备时如需要,应调节pH值至6~8。中成药组方成分和制造工艺多样,决定产品的pH值范围较广,所需缓冲能力较大,缓冲范围涵盖pH值6~8的缓冲液。如麻仁丸配方为火麻仁、枳实(炒)、苦杏仁、大黄、炒白芍、姜厚朴。其制法为以上六味,除火麻仁、苦杏仁外,其余大黄等粉碎成细粉,再与火麻仁、苦杏仁掺研成细粉,过筛,混匀。粉末用炼蜜加适量的水制丸,干燥,制成水蜜丸;或加炼蜜制成小蜜丸或大蜜丸,即得[11]。这一制作过程没有对成品的酸碱度有特殊要求。又如一清胶囊的处方为黄连、大黄、黄芩。其制法是以上三味,分别加水煎煮两次,合并煎液,滤过,滤液分别减压浓缩,喷雾干燥,制得黄芩浸膏粉及大黄和黄连的混合浸膏粉。两种浸膏粉分别制颗粒,干燥,粉碎,加入淀粉、滑石粉和硬脂酸镁适量,混匀,装入胶囊,制粒,即得。整个过程没有测定酸碱度[11]。再如乙肝益气解郁颗粒配方为柴胡(醋炙)、白芍、枳壳、橘叶、黄芪、丹参、党参、茯苓、桂枝、瓜蒌、刺五加、黄连、法半夏、山楂、决明子、五味子。其制法是以上16味,白芍、茯苓、法半夏分别粉碎,过筛,依次取细粉混匀,备用;剩余的粗粉备用。五味子粉碎后用80%乙醇回流提取两次,合并提取液,回收乙醇,备用。其余柴胡(醋炙)等12味及白芍等三味的粗粉加水煎煮两次,合并煎液,静置 12小时,取上清液,与上述五味子提取液合并,浓缩,加入上述细粉及适量糖粉混匀,制成颗粒[11]。从以上丸剂、胶囊剂、颗粒剂的举例中可以看出中成药的pH范围会比较宽泛,将被检样品的前处理液加入胰酪大豆胨琼脂做菌落总数的培养,或许会改变培养基的酸碱度进而影响菌落的生长繁殖,从而影响菌落计数结果的准确性。根据细菌适应酸碱度不同可将微生物分成:中性微生物、嗜酸性微生物、耐酸性生物、嗜碱性微生物、耐碱性微生物等。培养基酸碱环境的改变,必然影响微生物的生长繁殖。另有研究表明,药品的分散度也会影响供试液的pH值,进而影响微生物的生长造成实验结果的差异[12]。
1.3 非离子表面活性剂的添加浓度
增加被检样品的分散度和溶解度有利于样品中的微生物更均匀的分布于处理液中。取样均匀性的提升有助于提高微生物的检出率。吐温80为非离子型表面活性剂,亲水性强,是优良的O/W型乳化剂,对植物油、矿物油、动物油脂等均有良好的乳化作用。根据《中国药典》2020版四部通则1105,供试液前处理添加吐温80浓度为0.1%,如水不溶性非油脂类分散力较差的供试品,可在稀释液中加入无菌0.1%的聚山梨酯80。油脂类供试品可加入无菌十四烷酸异丙酯,或与最少量并能使供试品乳化的无菌聚山梨酯80或其他无抑菌性的无菌表面活性剂充分混匀[1]。表面活性剂浓度过高会使细菌细胞膜中的脂类溶解而造成菌体死亡[13-16]。因此合适浓度的表面活性剂的使用尤为重要。王康[17]等增加吐温 80比例制备中药提取物穿心莲内酯固体分散体发现其能有效地提高穿心莲内酯的溶出速率。高飞[18]等在化妆品检测使用含1 g/L卵磷脂和7 g/L的吐温80生理盐水做缓冲液,可中和化妆品中防腐剂对绿脓杆菌和金黄色葡萄球菌的抑制作用。张华光[19]等在缓冲液中添加3%吐温80和0.3%卵磷脂中和抑菌性较强的药品。中成药原料来源广泛,有动植物矿物等,所以表面活性剂对于中成药在计数法前处理中的最适用量仍有待研究。
1.4 中和剂或灭活方法
中成药种类多且成分复杂,难以归入药典列出的干扰物种类中。许多中成药对临床耐药细菌具有较好的抑制作用,临床上也常用抗菌中成药和抗生素联合应用以降低细菌的耐药性。深入研究中药抑菌作用和机制,大致可分为直接和间接抑制作用。直接抑制作用包括消除或逆转细菌耐药质粒、抑制细菌β-内酰胺酶活性和外排泵、改变细胞膜的通透性与消除生物膜等。间接抑制作用主要是:中药通过提高机体免疫力对抗耐药性细菌。据研究[20-22],许多中药有抑菌作用,如黄芩、黄连、连翘、五倍子、五味子、乌梅、金银花等57种,中成药包括黄连上清片、穿心莲内酯胶丸、妇必舒胶囊等。有些中药的抗菌作用机制不是单一的,而是能够在多个方面发挥作用,所以药典常见中和剂或灭活方法(详见表1)是否能满足、何种浓度能满足有抑菌成分中成药的计数法检验要求尚待研究。
表 1 《中国药典》2020版常见的中和剂或灭活方法[1]干扰物 可选用的中和剂或灭活方法 戊二醛、汞制剂 亚硫酸氢钠 酚类、乙醇、醛类、吸附物 稀释法 醛类 甘氨酸 季铵化合物、对羟基苯甲酸、
双胍类化合物卵磷脂 季铵化合物、碘、对羟基苯甲酸 聚山梨酯 水银 巯基醋酸盐 水银、汞化物、醛类 硫代硫酸盐 EDTA、唆喏酮类抗生素 镁或钙离子 磺胺类 对氨基苯甲酸 β-内酰胺类抗生素 β-内酰胺酶 2. 优化中成药前处理的方法
陶明[23-24]等发现影响抑菌干混悬剂微生物限度方法适用性的因素主要是样品原料的分散性和中和剂的有效单位。对药品进行微生物限度计数法前处理的目的是:在生物样本安全的前提下通过前处理使被检样品成为均匀的溶液或悬浊液,以保证取样的均匀性。这样吸取供试液时,既可保证液体分散均匀,又可避免只吸取上清液或沉淀物,还可防止被检样品溶散不均造成制备液pH不同而形成结果偏离[4,7,25]。优化中成药前处理的方法有利于最终选取合适的检验方法(常规、稀释、中和、薄膜过滤法)消除样品的抑菌性,取得科学、准确的实验结果。
2.1 减小被检样品的粒度
中成药大致分为口服和外用两种使用方式,口服剂型大多为片剂、胶囊、丸剂等。无论中成药成分多复杂,减小被检样品的粒度从而增加样品的溶解度和分散度都是较佳选择。最直接减小被检样品的粒度方法就是提高匀浆效率。《中国药典》2020版对前处理匀浆的转速没有特别规定,而《食品安全国家标准食品微生物学检验菌落总数测定》(GB4789.2-2020)中规定检测样品的匀浆转数常规为8 000~10 000 r/min,持续1~2 min[26-27]。有研究[28]分别用匀浆仪和研磨法对9种丸剂和3种片剂进行前处理,从各组实验所得的细菌数平均值来看,匀浆法测定的细菌数大于研磨法,并呈显著性差异,如槐角丸、益肝丸、通窍鼻炎片在研磨时菌落数为4.0×102、2.7×103、2.9×102CFU/g,经均质器细匀后菌落数为8.7×102、3.4×104、6.4×102CFU/g,说明样品均质的细腻均匀可提高细菌检出率。庞云娟等[29]报道,供试液制备过程中被检样品分散度和溶解度不足是造成实验结果偏离的原因之一。以上研究表明适当提高匀浆效率可增加样品的分散度和溶解度,进而提高细菌检出率以达到提升检验准确度的目的。均质器转速和时间可参考食品菌落总数检测标准。
2.2 选择pH7.2的磷酸盐缓冲溶液体系
磷酸盐缓冲溶液可以通过H2PO4−和HPO42-在不同的pH下形成缓冲体系。当H2PO4−和HPO42-的浓度比为1∶1时,此时溶液的pH值为6.86,也被称为磷酸盐缓冲液的电中性点。在电中性点的pH值下,磷酸盐缓冲溶液的缓冲能力最弱。随着pH值的升高,H2PO4−的浓度逐渐降低,溶液的缓冲能力逐渐增强。当pH升到7.21时,H2PO4−和HPO42-的浓度比为1∶2,此时溶液的缓冲能力最强,称为磷酸盐缓冲溶液的最大缓冲范围。随着pH值的继续上升,HPO42-的浓度逐渐升高,H2PO4−的浓度逐渐降低,溶液的缓冲能力逐渐减弱。磷酸盐缓冲溶液的缓冲范围在pH值5.8~8.0之间,这个范围是根据H2PO4−和HPO42-的浓度比和pH值的关系所确定的,并且在pH值7.21左右具有最大的缓冲能力[30],所以pH7.2的磷酸盐缓冲溶液最适合中成药的前处理。
2.3 选取合适的表面活性剂浓度
许多中成药含抑菌成分,通过添加表面活性剂吐温80,可提高非水溶性成份在稀释剂中溶解度和分散度。研究[31,32]表明,添加表面活性剂效果优于调节pH值,因当药品含有抑菌性成分时,降低pH值会增加药品的抑菌性。为方便分析中成药的抑菌性,我们将中成药分为以下几类:①清热解毒类中成药常含有板蓝根、黄芩、金银花等有较强抑菌能力;②止咳平喘类的中成药若含有麻黄、川贝母、薄荷脑等成分的药物的抑菌性也比较强;③胃肠道类中成药如含有广藿香、紫苏叶等成分的药物也有较强的抑菌作用;④抗感冒类药大多含有较高金银花、甘草、柴胡等中药抑菌性较强;⑤妇科内服类中成药比外用药抑菌性弱;⑥镇痛抗炎抗风外用中成药如含有黄柏对金黄色葡萄球菌和铜绿假单胞菌有抑制作用[33]。欧洲药典11.0对有抑菌作用药品选用的缓冲液其中含3%聚山梨脂80和0.3%蛋黄卵磷脂[10],既能增加被测样品的分散度和溶解度,又能中和药品本身的抑菌成分同时又可增加样品中细菌的检出率。[19]
2.4 选取合适的稀释液
既满足方法适应性菌株的回收率要求又提高样品溶解度和悬浊液的稳定性,是优化前处理过程的关键。稀释液在前处理的过程中起着重要的作用,一方面需要最大程度提供各类菌株的生存条件,另一方面要易于药品的溶解和分散。《中国药典》2015年版药品微生物限度检查方法实例中保济丸在微生物限度计数检验选用了两种稀释液,先用胰酪大豆液体培养基将被检样品制成1∶100的供试液,再取上清液薄膜过滤,并用含0.1%吐温80的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液冲洗滤膜[34]。前者可提高菌株回收率,后者可增加溶解和分散。另外有研究[35]表明,参考《中国药典》使用标准菌株进行化妆品微生物指标检验的供试液制备,研究不同的前处理方法的适用性结果显示:使用含中和剂的大豆酪蛋白葡萄糖卵磷酯吐温80(SCDLP)液体培养基、改良卵磷脂肉汤、戴伊恩格利中和肉汤(D/E中和肉汤)制备供试液,加菌计数回收试验结果及控制菌(耐热大肠菌群、铜绿假单胞菌、金黄色葡萄球菌)阳性检出率,均优于按照《化妆品安全技术规范》(2015年版)用生理盐水制备供试液,其中采用 D/E 中和肉汤进行样品制备,对样品中防腐剂的中和效果最好。
3. 小结与展望
《中国药典》2020年版要求生产厂家进行一厂、一品、一规的微生物限度标准制订和验证实验,验证报告要完整、可靠。作为药品检验机构由于检验周期所限,实际抽检工作中不可能像生产厂家去一一验证。因此,分析研究中成药这一大类非无菌药品计数法检验的特点,优化检验过程,特别是样品前处理是检验中成药的重要环节。中成药成分多为动植物和矿物,使计数法前处理时难以简单用溶解度分类,往往同一种药品各实验室选择不同检验方法,导致检验结果差异加大。且中药炮制工艺多样使中成药的酸碱度范围宽泛,如果药品前处理时稀释液的缓冲能力不强,会影响后续培养基的酸碱度,进而影响检验结果的准确性。有些中成药本身具有抑菌性,若不中和或去除会造成假阴性结果。
以上因素直接影响中成药计数法的检出率和准确度,寻找一种分散度和溶解度好,缓冲力强且能中和药品抑菌性,又对受损细菌有修复力的缓冲液显得尤为迫切。本文从影响中成药计数法检验因素入手,层层分析寻找解决方案。综合中国药典和美国药典以及相关文献内容归纳出解决的途径:首先在稀释液中加入适宜的非离子表面活性剂吐温80和卵磷脂(3%吐温80和0.3%卵磷脂)等中和剂,可以起到增加药品分散度和溶解度并中和部分抑菌性的作用;其次通过增加适宜浓度的磷酸盐缓冲离子对(Na2HPO4和KH2PO4),使缓冲液达到最大缓冲能力,用以降低中成药因偏酸或偏碱对培养基的影响;再则增加缓冲液中生长因子和维生素以利于受损细菌的快速恢复。最后选择合适的匀浆速度和时间,在适宜剪切力的作用下使缓冲液和被检样品充分混和均匀。
随着课题研究进一步深入,最终可创新出一款可加强分散度和溶解度、提高取样均匀性、降低中成药抑菌性、加强缓冲能力、加强短时间修复受损细菌能力的改良缓冲液。以提高中成药计数法检验结果的准确性、重复性及工作效率,解决中成药计数法检验中遇到的诸多问题。为监测中成药计数法这类非无菌制剂的安全性和有效性提供现实的应用价值。
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[1] WELLMAN P J, MILLER D K, LIVERMORE C L, et al. Effects of (-)-ephedrine on locomotion, feeding, and nucleus accumbens dopamine in rats[J]. Psychopharmacology (Berl),1998,135(2):133-140. [2] MILLER D K, NATION J R, WELLMAN P J. Sensitization of anorexia and locomotion induced by chronic administration of ephedrine in rats[J]. Life Sci,1999,65(5):501-511. doi: 10.1016/S0024-3205(99)00271-4 [3] SCHMUED L C, BOWYER J F. Methamphetamine exposure can produce neuronal degeneration in mouse hippocampal remnants[J]. Brain Res,1997,759(1):135-140. doi: 10.1016/S0006-8993(97)00173-X [4] BOWYER J F, HOPKINS K J, JAKAB R, et al. L-ephedrine-induced neurodegeneration in the parietal cortex and thalamus of the rat is dependent on hyperthermia and can be altered by the process of in vivo brain microdialysis[J]. Toxicol Lett,2001,125(1-3):151-166. doi: 10.1016/S0378-4274(01)00440-4 [5] LOHOF A M, IP N Y, POO M M. Potentiation of developing neuromuscular synapses by the neurotrophins NT-3 and BDNF[J]. Nature,1993,363(6427):350-353. doi: 10.1038/363350a0 [6] EL-HUSSEINI A E, SCHNELL E, CHETKOVICH D M, et al. PSD-95 involvement in maturation of excitatory synapses[J]. Science,2000,290(5495):1364-1368. doi: 10.1126/science.290.5495.1364 [7] HANSEN S, JØRGENSEN J, NYENGAARD J, et al. Early life vitamin C deficiency does not alter morphology of hippocampal CA1 pyramidal neurons or markers of synaptic plasticity in a Guinea pig model[J]. Nutrients,2018,10(6):749. doi: 10.3390/nu10060749 [8] 郑芳昊, 罗佳波. 麻黄对大鼠中枢神经系统毒副作用的研究[J]. 时珍国医国药, 2015, 26(3):534-536. [9] 郑芳昊, 罗佳波. 麻黄对大鼠额叶皮层氧化损伤的影响[J]. 时珍国医国药, 2016, 27(6):1313-1316. [10] VICARIO-ABEJÓN C, COLLIN C, MCKAY R D, et al. Neurotrophins induce formation of functional excitatory and inhibitory synapses between cultured hippocampal neurons[J]. J Neurosci,1998,18(18):7256-7271. doi: 10.1523/JNEUROSCI.18-18-07256.1998 [11] SHERWOOD N T, LO D C. Long-term enhancement of central synaptic transmission by chronic brain-derived neurotrophic factor treatment[J]. J Neurosci,1999,19(16):7025-7036. doi: 10.1523/JNEUROSCI.19-16-07025.1999 [12] NARISAWA-SAITO M, CARNAHAN J, ARAKI K, et al. Brain-derived neurotrophic factor regulates the expression of AMPA receptor proteins in neocortical neurons[J]. Neuroscience,1999,88(4):1009-1014. doi: 10.1016/S0306-4522(98)00496-5 [13] NARISAWA-SAITO M, SILVA A J, YAMAGUCHI T, et al. Growth factor-mediated Fyn signaling regulates alpha-amino-3-hydroxy-5-methyl-4-isoxazolepropionic acid (AMPA) receptor expression in rodent neocortical neurons[J]. Proc Natl Acad Sci USA,1999,96(5):2461-2466. doi: 10.1073/pnas.96.5.2461 [14] CUNHA C, BRAMBILLA R, THOMAS K L. A simple role for BDNF in learning and memory[J]. Front Mol Neurosci,2010(3):1. [15] TAFT C E, TURRIGIANO G G. PSD-95 promotes the stabilization of young synaptic contacts[J]. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci,2014,369(1633):20130134. [16] LIM I A, MERRILL M A, CHEN Y C, et al. Disruption of the NMDA receptor-PSD-95 interaction in hippocampal neurons with no obvious physiological short-term effect[J]. Neuropharmacology,2003,45(6):738-754. doi: 10.1016/S0028-3908(03)00276-4 -