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银黄软胶囊是一种清热、解毒、消炎作用的中成药。因中药起效慢、副作用少，一些不良商家为了寻求暴利，在中成药中添加西药成分，短时间内提高中成药的疗效，误导消费者以寻求高利润。因双氯芬酸钠有消炎镇痛作用、芬布芬有抗炎作用、盐酸罗通定有镇痛作用，就成了不良商家非法添加的成分之列，据报道有30%的抗风湿类健康产品中非法添加了双氯芬酸钠[1]，多种抗风湿镇痛类中药制剂中非法添加双氯芬酸钠、芬布芬等此类化学药物[2]。因此，建立一种快速有效的检测方法，对可能非法添加了西药成分的中成药进行现场检测具有重要的意义。
近几年，薄层色谱-表面增强拉曼光谱（TLC-SERS）联用技术广泛地应用于各种领域[3-4]，尤其是在药物非法添加研究领域被逐渐认可[5-8]。本研究应用TLC-SERS联用技术，探索双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定在中成药银黄软胶囊中非法添加的鉴别方法，以期为进一步的中成药快速检验提供实验依据。
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便携式拉曼光谱仪（BWS415，B&W Tek Inc., U.S.A），激光发射波长785 nm，分辨率5 cm–1；WFH-203B型三用紫外分析仪（上海精科实业有限公司）；离心机（TG16-WS，上海卢湘仪离心机有限公司）；KQ-250DB型数控超声波清洗器（昆山超声仪器有限公司）；薄层板HSGF254（烟台市化学工业研究所）。
双氯芬酸钠（批号：100334-200302，供含量测定用）、芬布芬（批号：100415-201102，纯度99.4%）、盐酸罗通定（批号：100222-200702，供鉴别用）均购自中国食品药品检定研究院。实验所用阴性样品由山东省食品药品检验所提供，银黄软胶囊（批号：359161004，石药集团欧意药业有限公司）。乙酸乙酯（国药集团化学试剂有限公司，批号：20150410）、石油醚（天津市富宇精细化工有限公司，批号：12589-2007）；硝酸银（批号：20140320，国药集团化学试剂有限公司），柠檬酸钠（分析纯，批号：20120429，国药集团化学试剂有限公司）；实验用水为蒸馏水。
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对照品溶液：精密称取对照品双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定对照品2 mg，置EP管中，加入甲醇2 ml溶解，制成浓度为1 mg/ml的溶液，作为对照品溶液，冷藏保存，备用。
模拟假阳性样品溶液：取中成药银黄软胶囊（经山东省食品药品检验院薄层色谱-质谱联用法检测，不含以上3种对照品，可作为阴性样品）一次剂量，置EP管中，并精密量取双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定对照品溶液加入EP管中，与银黄软胶囊样品溶液混匀，甲醇溶解，振荡，超声（40 kHz，250 W）30 min，10 000 r/min离心10 min，收集上清液，微孔滤膜滤过，作为假阳性样品，冷藏保存，备用。
阴性样品溶液：取中成药银黄软胶囊一次剂量，置EP管中，加入甲醇2 ml溶解，振荡，超声（40 kHz，250 W）30 min，10 000 r/min离心10 min，取上清液，微孔滤膜滤过，作为阴性样品，冷藏保存，备用。
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精密称取45 mg的硝酸银，加入少量去离子水使其溶解。溶解后移至250 ml的容量瓶中，用去离子水定容。用电磁搅拌加热器不断搅拌并将其加热至微沸，逐滴加入5 ml浓度为1 %柠檬酸钠溶液并继续加热，保持微沸60 min，继续搅拌至溶液冷却，得灰绿色银溶胶，避光保存[8]。
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分别取1 mg/ml双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定对照品溶液，以点样点胶比为变量，激光功率，积分时间为定值，检测出峰效果，筛选3种成分的最佳点样点胶比；同理筛选3种成分的最佳激光功率、积分时间。
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以对照品溶液与阴性样品溶液作为对照，将配制的添加不同浓度对照品的模拟阳性样品点在同一块硅胶薄层板上，按优选的最佳光谱条件设置点样点胶比、激光功率、积分时间，根据信噪比（S/N=3）评价出峰效果，确定各个对照品的检测限。
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将配置好的各种样品、对照品溶液置于薄曼联用仪内对应位置，高效硅胶薄层板置于仪器平台上，设置点样量与点样位置，由联用仪完成点样操作。取出点样后的薄层板，以选定的石油醚-乙酸乙酯（3:5）展开系统，室温下展开80 mm，取出晾干，放回联用仪，于内置254 nm紫外灯下检视定位以确定点胶位置，设置合适的点胶量、激光强度与积分时间，由联用仪完成点胶操作后，随即进行拉曼检测。
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对照品双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定最佳出峰条件分别是：双氯芬酸钠点样点胶比2:3，激光功率30%，积分时间30 s；芬布芬点样点胶比2:2，激光功率40%，积分时间30 s；盐酸罗通定点样点胶比1:2，激光功率50%，积分时间30 s。拉曼图谱如图1所示。
图 1 3种成分最佳出峰条件下的SERS图谱
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从图2、图3、图4中可以看出，3种对照品在薄层色谱中分离程度高，双氯芬酸钠的比移植（Rf）值为0.75，芬布芬Rf值为0.54，盐酸罗通定Rf值为0.21。由“2.1”项可知，双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定最佳点样点胶比分别为2:3、2:2、1:2（即点样量分别为2 μl、2 μl、1 μl，故银黄软胶囊中添加的双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定最低检测限对应的点样沉积量分别为0.2 μg、0.2 μg、0.1 μg。
图 2 双氯芬酸钠薄层及各斑点拉曼光谱
图 3 芬布芬薄层及各斑点拉曼光谱
图 4 盐酸罗通定薄层及各斑点拉曼光谱
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从图5薄层板中可以看出，同时添加了3种对照品的银黄软胶囊模拟的假阳性样品溶液4、5、6、7号中出现了与双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定相同Rf值的斑点，可初步确定4、5、6、7中添加了双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定。为进一步确证，对各斑点进行SERS检测，在拉曼仪数据处理系统中与相应对照品色谱斑点的SERS光谱进行比对，结果表明4、5、6、7号中对应斑点的SERS图谱与双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定对照品的SERS图谱相同，见图5中SERS图谱。
图 5 模拟假阳性样品薄层及拉曼光谱
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由图6可知，双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定3种成分的分子结构中均含有苯环、C—C、C=O基团，故3种成分的拉曼光谱特征峰有9个共有峰，在576、712、1 004、1 130、1 240、1 316、1 394、1 454、1 564 cm–1左右，同一共有峰的强度有所不同，取代基不同拉曼位移略有变化（见表1）。此外，由于3种成分的分子结构含有不同的基团，也有相应的差异峰，如740 cm–1为盐酸罗通定特有峰。共有峰、差异峰以及峰强度共同组成了区别于其他成分的特征峰群，这为TLC-SERS专属性鉴别提供了依据。
表 1 3种成分的拉曼光谱特征峰(cm–1)
成分 特征峰 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 双氯芬酸钠 390 576 712 854 1 004 1 130 1 162 1 238 1 316 1 394 1 454 1 570 – 芬布芬 384 576 712 854 1 004 1 130 1 240 1 276 1 316 1 394 1 454 1 564 – 盐酸罗通定 394 576 712 740 1 005 1 132 1 168 1 240 1 278 1 320 1 395 1 456 1 564 
图 6 3种成分的分子结构
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本研究通过反复试验，确定了TLC展开剂为石油醚-乙酸乙酯（3:5），得到了较好的展开效果。在展开的TLC薄层板上，3种对照品对应的斑点处，模拟假阳性样品与3种对照品有相同斑点；经过进一步的SERS检测，模拟假阳性样品的斑点拉曼光谱特征峰与对照品斑点拉曼光谱特征峰一致，且重复性良好，说明TLC-SERS联用技术简便、准确、可靠，可同时检测银黄软胶囊中非法添加的双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定3种成分。
本研究采用TLC-SERS联用技术所建立的检测方法，对中成药银黄软胶囊中非法添加西药双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定3种成分的，能满足同时、快速检测的要求。该方法实用性强，对人员技术要求低，尤其适合现场快速检测。
Simultaneously detect three illegal additive components in Yinhuang soft capsule by TLC-SERS
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摘要:
目的 建立薄层色谱-表面增强拉曼光谱（TLC-SERS）联用技术同时检测中成药银黄软胶囊中非法添加的西药化学成分双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定。 方法 将待测样品点于硅胶板，用石油醚-乙酸乙酯（3:5）进行薄层展开，在254 nm紫外光灯下进行定位检测，在分离的各个斑点处按优选的最佳条件喷加纳米银胶溶液，用表面增强拉曼光谱（SERS）进行定性鉴别。 结果 本研究建立了TLC-SERS联用技术同时检测银黄软胶囊中非法添加的双氯芬酸钠、芬布芬、盐酸罗通定的方法，并确定了3种化学成分的最低检测限。 结论 TLC-SERS联用技术快速、准确、灵敏度高，可同时快速检测银黄软胶囊中非法添加的双氯芬酸钠、芬布芬和盐酸罗通定3种成分。 -
关键词:
- 银黄软胶囊 /
- 非法添加 /
- 薄层色谱-表面增强拉曼光谱
Abstract:Objective To establish a simultaneous detection of diclofenac sodium, fenbufen and rotundine hydrochloride illegally added in Yinhuang soft capsules by TLC-SERS. Methods The samples to be measured were placed on the silica gel plate, and the thin layer was developed with petroleum ether-ethyl acetate (3:5). Location detection was carried out under 254 nm ultraviolet lamp. Nano-silver colloidal solution was sprayed at each spot of separation according to the optimum conditions, and then qualitative identification was done by TLC-SERS. Results A method for simultaneous determination of diclofenac sodium, fenbufen and rotundine hydrochloride illegally added in Yinhuang soft capsule by TLC-SERS was established. And the minimum detection limits of three chemical constituents were determined. Conclusion TLC-SERS was a rapid, accurate and sensitive method for the simultaneous and rapid detection of diclofenac sodium, fenbufen and rotundine hydrochloride illegally added into Yinhuang soft capsule. -
Key words:
- Yinhuang soft capsule /
- illegal addition /
- TLC-SERS
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生脉注射液临床上常用于辅助治疗心肌梗塞、心源性休克、脓毒症和感染性休克。心肌梗塞引起组织产生大量氧自由基，直接损伤心肌细胞并触发细胞凋亡，免疫介导的炎症损伤会加大心梗范围和心梗损伤[1]。心源性休克激活的炎症反应可诱导产生大量NO，促进细胞凋亡[2]。脓毒血症是由细菌引起的全身性炎症，大量致炎因子破坏机体的免疫平衡，从而导致机体代谢紊乱[3]，严重者可能引起感染性休克。本研究特选择抗氧化及抗炎能力作为生物效应指标，考察生脉注射液质量与生物效应之间的相关性。
课题组前期对生脉注射液中11种成分[4]进行了指认并进行了定量，均符合药典标准。药理学实验表明，生脉注射液中人参皂苷、木质素和麦冬皂苷等多种化学成分均在细胞及动物模型上表现出良好的抗炎效果[5-8]，且临床研究表明其可以通过抗炎通路发挥对器官损伤的保护作用[9-10]。现今生物效应评价在中药材和中成药质量控制研究中有所应用[11-12]，2015版《中国药典》收录了生物活性测定法作为质量控制标准，如洋地黄生物测定法和黄体生成素生物测定法，说明通过生物效应控制药品质量是可行的。
抗炎和抗氧化损伤是生脉注射液产生药理作用的重要机制，但现今的质量标准仅对化学成分进行定性定量分析，不能全面体现其整体的药效活性，为此，本研究尝试通过评价其抗氧化能力以及抗炎活性，建立有效的生脉注射液生物学质量控制方法。
1. 材料
1.1 试剂与药品
二苯基苦基苯肼（DPPH，质量分数≥97%，含10%～20%苯，批号：PRPDE-JO，梯希爱（上海）化成工业发展有限公司）；水溶性维生素E (Trolox)、DMEM培养基和磷酸盐缓冲液(PBS)均购自北京Solarbio公司；胎牛血清（FBS，德国PAN Seratech公司）；N-硝基-L-精氨酸甲酯（L-NAME）、NO检测试剂盒（上海碧云天生物技术有限公司）；无水乙醇（北京化工厂）；水（屈臣氏）。
9批次生脉注射液分别由5个不同厂家生产，样品详细情况见表1。
表 1 生脉注射液样品来源、批号及有效成分含量(μg/ml)[4]编号 生产厂家 批号 规格 人参皂苷Rb1 人参皂苷Re 人参皂苷Rg1 五味子醇甲 麦冬皂苷D S1 A 16120401005 10 ml/支 61.16 51.39 84.69 51.43 1.48 S2 B 160502 10 ml/支 101.69 55.61 88.99 73.09 3.42 S3 C 17071014 10 ml/支 56.99 44.87 80.42 36.78 1.68 S4 C 17040423 20 ml/支 63.12 44.51 81.54 39.63 1.28 S5 D 1704252 20 ml/支 77.15 62.10 86.11 29.05 3.62 S6 E 17091302 10 ml/支 85.52 57.74 88.45 33.55 1.40 S7 E 17092903 10 ml/支 80.43 41.52 86.36 37.30 1.33 S8 E 17061103 20 ml/支 74.88 61.06 80.00 35.18 1.72 S9 E 17053005 20 ml/支 79.97 48.54 80.34 44.83 1.59 1.2 主要仪器及设备
电子分析天平（AB265-S，梅托勒-托利多有限公司）；超声波清洗仪（B25-12DT，宁波新芝生物科技股份有限公司）；TS-2000A脱色摇床（海门市其林贝尔仪器制造有限公司）；96孔板、多功能连续波长酶标仪（InfiniteM1000，TECAN公司）；低速离心机（SC-3610，安徽中科中佳科学仪器有限公司）；二氧化碳培养箱（MCO-15AC，三洋电机株式会社）。
1.3 细胞培养
RAW264.7细胞为小鼠单核巨噬细胞，购于中国医学科学院基础医学研究所细胞中心。培养条件：完全培养基为含10%FBS的DMEM培养基，在37℃含5% CO2的培养箱中培养。每天换液，细胞生长达对数生长期时，传代（传代比例为1:6）并开展实验，实验用细胞控制在10代以内。
2. 方法与结果
2.1 DPPH法评价生脉注射液质量
2.1.1 实验过程
取96孔板，每孔依次加入100 μl初浓度2.0%的受试液、100 μl 0.5 mmol/L DPPH溶液，震荡均匀后避光反应20 min。
测定方法：每孔依次加入100 μl受试液和DPPH溶液，在摇床上振荡均匀，避光反应20 min后，用酶标仪测定波长在517 nm处的吸光度。
2.1.2 方法学考察
考察内容：①线性关系：分别吸取样品编号为S9的药液，用纯水定容得到浓度为8%的生脉注射液受试液。逐级稀释，测定其吸光度并计算该浓度下的平均吸光度。以终浓度为横坐标（X），平均吸光度为纵坐标（Y），绘制标准曲线，得到的线性关系方程为Y=-0.2081X+1.2209（r=0.9996）（图1-A），表明生脉注射液具有较强的DPPH自由基清除能力且具有浓度依赖性，体积浓度和平均吸光度具有良好的线性关系，在0%~2.0%范围内线性关系良好。②精密度：取样品S9，配制得到浓度2.0%的受试液，设置平行复孔，按照“2.1.1”项下操作测定吸光度，计算其吸光度的RSD值为2.25%（见表2），表明该方法满足方法学精密度要求。③重复性：取样品S9，配制得到浓度2.0%的受试液，设置平行复孔，按照"2.1.1“项下操作测定吸光度，计算其平均吸光度的RSD值为2.21%（见表2），表明该方法满足方法学重复性要求。④稳定性：取样品S9，分别于0、4、8、24、48和72 h，配制得到浓度2.0%的受试液，设置平行复孔，按照“2.1.1”项下操作测定吸光度，计算其平均吸光度的RSD值为2.47%（见表3），表明该方法在72 h内稳定性良好。
图 1 生脉注射液抗氧化生物活性评价A. 生脉注射液对DPPH清除作用的标准曲线；B. Trolox对DPPH清除作用的标准曲线；C. 1.0%各批次生脉注射液相当于Trolox的量（mmol/L）表 2 1.0%生脉注射液对DPPH清除作用的精密度和重复性考察编号 精密度试验 重复性试验 吸光度 均值 RSD(%) 吸光度 均值 RSD(%) 1 1.063 4 1.087 9 2.25 1.138 9 1.135 6 2.22 2 1.115 6 1.175 6 3 1.098 3 1.135 7 4 1.114 3 1.096 7 5 1.064 9 1.129 2 6 1.070 9 1.137 7 表 3 1.0%生脉注射液对DPPH的清除作用的稳定性时间 吸光度 均值 RSD(%) 0 1.038 5 1.078 8 2.47 4 1.105 7 8 1.072 2 24 1.080 5 48 1.065 7 72 1.110 0 2.1.3 生脉注射液抗氧化生物活性的质量评价
精密称定Trolox，加入100 μl无水乙醇溶解，纯水定容，得到初浓度为15.46 mmol/L的Trolox溶液。将其逐级稀释，按照“2.1.1“项下操作测定并计算平均吸光度，以终浓度为横坐标（X），平均吸光度为纵坐标（Y），绘制标准曲线。得到的线性关系方程为Y=–0.0789X+1.1674（r=0.9951）（见图1-B），表明Trolox清除DPPH能力在作用浓度0.43~5.56 mmol/L范围内具有良好线性关系。
将9批次生脉注射液清除DPPH自由基的结果与Trolox比较，折算得到各批次生脉注射液相当于水溶性Trolox的作用浓度（见图1-C）。结果表明，终浓度1.0%的各批次生脉注射液清除自由基能力相对于Trolox作用浓度范围为1.2~1.9 mmol/L，在清除自由基即抗氧化能力方各批次不存在较大差异。
2.2 Griess试剂盒评价生脉注射液的抗炎活性
2.2.1 Griess试剂盒测定生脉注射液抑制NO释放能力
使用完全培养基配制为1.2%的生脉注射液样品溶液，及初浓度100μg/ml的LPS样品溶液。
取对数生长期的RAW264.7细胞，制备成2×106个/ml的细胞悬液，以每孔100 μl注入96孔板。培养24 h后，弃去培养基，每孔加入100 μl样品溶液和100 μl的LPS溶液，孵育24 h后吸取50 μl上清液，按照Griess试剂盒说明书操作，用酶标仪测定波长540 nm处的吸光度。
2.2.2 方法学考察
考察内容：①线性关系：精密吸取样品编号为S6的药液，用完全培养基制成浓度为4.0%的溶液。逐级稀释，测定吸光度并计算该浓度下的平均吸光度。以终浓度为横坐标（X），平均吸光度为纵坐标（Y），绘制标准曲线。得到线性方程为Y=–0.033ln(X)+0.243（r=0.9961）（见图2-A），表明生脉注射液具有良好的NO分泌抑制能力并具有浓度依赖性，终浓度和平均吸光度之间具有良好的线性关系，在0.2%~2.0%范围内线性关系良好。②精密度：取样品S6，配制得到浓度为1.2%的受试液，设置平行复孔，按照“2.1.1“项下操作测定吸光度，计算其吸光度的RSD值为1.71%（见表4），表明该法满足方法学精密度要求。③重复性：取样品S6，配制得到浓度为1.2%的受试液，设置平行复孔，按照“2.1.1“项下操作测定吸光度，计算其平均吸光度的RSD值为2.79%（见表4），表明该法满足方法学重复性要求。④稳定性：取样品S6，分别于0、4、8、24和48 h时，配制得到浓度1.2%的溶液，设置平行复孔，按照“2.1.1”项下操作测定吸光度，计算其平均吸光度的RSD值为2.66%（见表5），表明该方法在48 h内稳定性良好。
图 2 生脉注射液抗炎活性评价A. 生脉注射液对RAW264.7细胞分泌NO的标准曲线；B. L-NAME对RAW 264.7细胞分泌NO的标准曲线；C. 0.60%各批次生脉注射液相当于L-NAME的量（mmol/L）表 4 1.2%生脉注射液对LPS刺激264.7细胞分泌NO的精密度和重复性考察编号 精密度试验 重复性试验 吸光度 均值 RSD(%) 吸光度 均值 RSD(%) 1 0.276 0 0.272 9 1.71 0.272 9 0.285 0 2.79 2 0.272 3 0.281 1 3 0.265 0 0.289 0 4 0.276 1 0.291 6 5 0.275 0 0.290 6 表 5 1.2%生脉注射液对LPS刺激264.7细胞分泌NO的稳定性考察时间 吸光度 均值 RSD(%) 0 0.264 5 0.262 3 2.66 2 0.273 6 4 0.257 4 24 0.257 4 48 0.258 6 2.2.3 生脉注射液抗炎生物活性的质量评价
精密称定eNOS抑制剂L-NAME，逐级稀释，按照“2.1.1“项下操作，测定并计算平均吸光度，以终浓度为横坐标（X），平均吸光度为纵坐标（Y），绘制标准曲线。得到线性关系方程为Y=–0.052ln(X)+0.152（r=0.9957）（见图2-B），表明L-NAME抑制NO分泌能力在0.05~0.55 mmol/L范围内具有良好线性关系。
将9批次生脉注射液抑制NO分泌能力的结果与L-NAME比较，折算得到各批次生脉注射液相对于L-NAME的作用浓度（见图2-C）。
结果显示，除S2和S8样品外，终浓度0.6%的各批次生脉注射液对应的L-NAME浓度范围均在0.06~0.16 mmol/L范围内，表明在抑制NO分泌能力即抗炎能力方面S2和S8与其他样品存在较大差异。其中S2对应的L-NAME浓度远高于其他样品，其抗炎活性远高于其他样品组，推测这可能与化学成分含量差异有关，需要后续的实验加以证实。
3. 讨论
3.1 实验方法及阳性对照药的选择
测定抗氧化活性常用的方法有氧化自由基吸收能力（ORAC）、二苯基苦基苯肼（DPPH）法和总抗氧化能力检测（ABTS）法等，本实验首先采用DPPH法测定抗氧化能力，该方法操作简便，常用于体外评价化合物的抗氧化活性，其中Trolox和维生素C是常用的抗氧化剂对照药[13-14]，但相较之下，Trolox可通过清除自由基产生抗氧化机制，且具有剂量依赖性[15]，而维生素C稳定性较Trolox差，所以该方法选择了该药作为阳性对照。内皮型一氧化氮合酶（eNOS）诱导产生NO是NO产生的重要途径[16]，L-NAME作为eNOS抑制剂，选择其作为对照药可以更加直观地评价药物对细胞产生NO的抑制能力。
3.2 结果分析
参考2015版药典生物测定方法，该试验通过测定生脉注射液的抗炎和抗氧化能力，初步建立了生脉注射液的生物效应质量控制方法，该方法不仅能满足方法学要求，而且可以克服现行质量控制方法的局限性，还可以有效的评价中药复方制剂在治疗过程中产生的效应强度，实现“质-量-效”的有效结合[17]。
4. 展望
中药复方是一个组分复杂，不仅化学成分复杂，未知组分众多，而且其可能通过不同成分的配伍产生作用机制，即其药理机制不是单一化学成分能够阐明的，因此，仅对中药复方的化学成分进行评价难以对其成分及作用进行全面阐述。生物效应质量控制方法能对中药复方的整体组分药效进行把控，从药理活性方面评价中药复方质量，弥补现有质控方法的不足。在生物效应质控方法建立过程中，应注意以下问题：①质控方法应根据药效及药理机制研究选择合适的生物效应指标，充分反映该药的药理活性特征；②选择的对照药应具有足够的专属性、关联性和可测性，能够充分准确地反映药物的生物效应[18-20]。参考已有的生物质量控制研究[11，21]并对生脉注射液可能的药理活性进行筛选，对此进行考察。重点考察其方法学验证，结果显示该方法可行性高，方法学符合生物效应评价要求，可以反映生脉注射液的整体生物效应。但抗炎活性的测定实验要求较高的实验操作，且该方法对中药复方的整体生物活性进行测定，并未对可能产生药理活性的化学组分和含量进行探究和测定，可能产生药理活性的化学成分及作用机制尚不明确，值得后续的探讨。
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图 2 双氯芬酸钠薄层及各斑点拉曼光谱
1.1 mg/ml双氯芬酸钠；2.添加1 mg/ml双氯芬酸钠；3.添加0.1 mg/ml双氯芬酸钠；4.添加0.01 mg/ml双氯芬酸钠；5.阴性样品
图 3 芬布芬薄层及各斑点拉曼光谱
1.1 mg/ml芬布芬；2.添加1 mg/ml芬布芬；3.添加0.1 mg/ml芬布芬；4.添加0.01 mg/ml芬布芬；5.阴性样品
图 4 盐酸罗通定薄层及各斑点拉曼光谱
1.1 mg/ml盐酸罗通定；2.添加1 mg/ml盐酸罗通定；3.添加0.1 mg/ml盐酸罗通定；4.添加0.01 mg/ml盐酸罗通定；5.阴性样品
图 5 模拟假阳性样品薄层及拉曼光谱
1.双氯芬酸钠；2.芬布芬；3.盐酸罗通定；4-7.添加以上3种成分的银黄软胶囊A.4-7号样品中双氯芬酸钠光谱峰B. 4-7号样品中芬布芬光谱峰C. 4-7号样品中盐酸罗通定光谱峰
表 1 3种成分的拉曼光谱特征峰(cm–1)
成分 特征峰 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 双氯芬酸钠 390 576 712 854 1 004 1 130 1 162 1 238 1 316 1 394 1 454 1 570 – 芬布芬 384 576 712 854 1 004 1 130 1 240 1 276 1 316 1 394 1 454 1 564 – 盐酸罗通定 394 576 712 740 1 005 1 132 1 168 1 240 1 278 1 320 1 395 1 456 1 564 
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