The mechanism of nicotinamide combined with amphotericin B against Candida albicans based on metabolomics technology

Thermo Trace GC Ultra and DSQII气相色谱-质谱联用仪（Thermo fisher，USA）；METTLER AE 240型电子天平（瑞士梅特勒公司）；SW-CT-IF 型超净化工作台（苏州安泰空气技术有限公司）；HZ-9610KB 恒温培养箱（江苏太仓实验设备厂）；电子分析天平 AUW 220D（日本SHIMADZU 公司）；Infinite M200 多功能酶标仪（Austria TECAN 公司）。

甲氧基胺盐酸盐（Sigma Aldrich 公司）；吡啶（Sigma Aldrich 公司）； N-甲基-N-（三甲基硅烷）三氟乙酰胺（MSTFA，Sigma Aldrich 公司）；三甲基氯硅烷（TMCS，Sigma Aldrich 公司）；二甲基亚砜（DMSO，Sigma Aldrich 公司）；烟酰胺（Sigma Aldrich 公司）；两性霉素B（中国食品药品检定研究院）；正己烷（分析纯，购于国药试剂公司）。

白念珠菌SC5314（由瑞士V audois州立大学医学中心Dominique Sanglard教授惠赠）；酵母浸出粉胨葡萄糖（YPD）培养液：酵母浸膏10 g，蛋白胨20 g，葡萄糖20 g，溶解于1000 ml三蒸水，高压灭菌，4 ℃保存；RPMI 1640培养基：RPMI 1640培养基粉末10 g，吗啡啉丙磺酸34.5 g，碳酸氢钠2.0 g，加入三蒸水900 ml溶解，用氢氧化钠室温下调节pH至7.0，三蒸水定容至1 000 ml，0.22 µm微孔滤膜过滤除菌后于4 ℃保存。

取单克隆白念珠菌，接种至1 ml YPD培养液于30 ℃，200 r/min，培养16 h至对数生长期后，用RPMI 1640培养基稀释菌液至浓度为5×10³ cells/ml。为确定白念珠菌对药物的敏感性，采用肉汤微量稀释法并进行适当的调整，两种药物分别在96孔板按两倍递减稀释，NAM的浓度为0.313~80 mmol/L，AmB的浓度为0.005~2 μg/ml。与无药物组相比，将药物干预组的生长抑制率为80%时的药物浓度确定为MIC₈₀。

在此基础上，将培养至对数生长后期的菌液于多功能酶标仪中测定600 nm处的光密度值（OD₆₀₀）。使用RPMI 1640培养液调整菌液浓度至OD₆₀₀值为0.1，继续培养至OD₆₀₀值为0.2时，分别加入AmB和NAM进行干预，使AmB终浓度分别为0.005、0.01、0.02、0.04、0.08 µg/mL，NAM终浓度分别为0.125、0.25、0.5、1、2 mmol/L，继续培养4 h。对照组中加入相同体积的DMSO，其浓度应小于0.05%，以确保不影响白念珠菌的生长。将NAM-AmB联用组OD₆₀₀值降低至对照组OD₆₀₀值一半时对应的浓度确定为后续代谢组学研究中的给药浓度。

挑取单克隆白念珠菌，接种至1 ml YPD培养液于30 ℃，200 r/min，培养16 h至对数生长期，用YPD培养液调整菌液浓度至1x10⁶ cells/ml，取20 ml置于锥形瓶中培养，至OD₆₀₀值为0.2时进行药物干预。对于NAM组，加入适当浓度的NAM对照品溶液，使其浓度为1 mmol/L；对于AmB组，加入适当浓度的AmB对照品溶液，使其浓度为0.04 µg/ml；对于NAM-AmB联用组，加入适当浓度的NAM和AmB对照品溶液，使其浓度分别为1 mmol/L和0.04 µg/ml；对于对照组，加入相同体积的DMSO。继续培养4 h，收集样品，每组重复6个独立样本。

样品收集后，用灭菌的PBS清洗两次，3000 r/min离心3 min，弃上清。重悬于1 ml水，静置15 min。放入−80 ℃冰箱15 min后取出，60 ℃金属浴15 min，重复冻融操作3次，13 200 r/min离心，取上清液，冷冻干燥。

向上述冷冻干燥的样品中加入75 µl甲氧胺盐酸盐的吡啶溶液（20 mg/ml），涡旋5 min，70 ℃温孵1 h，再加入75 µl MSTFA溶液（含1%TMCS），50 ℃温孵30 min，13200 r/min离心5 min，取上清液1µl，注入气相色谱-质谱联用仪分析。

将样品沉淀物在室温下风干至恒重，称量样品干重，用于各样本质量校正。

色谱条件：采用Agilent DB-5MS石英毛细管柱（30 m×0.25 mm，0.25 µm）进行代谢物分离；进样口温度：260 ℃；升温程序：起始温度为70 ℃，保持3 min，4 ℃/min升至220 ℃，再8 ℃/min升至310 ℃，保持10 min；载气：高纯氦气；流速：1.0 ml/min。进样量为1µl。质谱条件：电子轰击源（EI源），温度：200 ℃，扫描范围50~800 amu。

将原始数据转化成CDF格式，利用R软件XCMS包对数据进行峰校正、对齐和积分，样品各峰面积分别以各自的细胞干重和内标进行校正。利用SIMCA 14.1.0（Umetrics，Sweden）软件进行偏最小二乘法判别分析（PLS-DA），以VIP>1.5或<0.5，P<0.05为阈值筛选差异代谢物，然后运用NIST库检索，进行差异代谢物的鉴定。

采用微量液基稀释法考察NAM与AmB对白念珠菌SC5314的作用，结果如表1所示。单独使用NAM和AmB时MIC₈₀分别为20 mmol/L、0.64 μg/mL，联用后的MIC₈₀分别为2 mmol/L、0.08 μg/mL。NAM或AmB单独使用时均表现出抗菌作用，而NAM和AmB的联用显著降低了MIC₈₀值。以部分抑制浓度指数（FICI）评价NAM与AmB的作用方式，结果显示NAM和AmB联用的FICI值为0.38（通常FICI<0.5为协同作用），表明两者联用具有协同抗真菌的作用。当联用组NAM和AmB浓度分别为1 mmol/L和0.04 μg/mL时，其OD₆₀₀值约为对照组的1/2，而单独给予该剂量下的NAM组与对照组相比OD₆₀₀几乎没有变化，AmB组OD₆₀₀约为对照组的75%，表现出轻微的抑制作用。为真实反映联用后代谢物的变化情况，本研究选择NAM和AmB药物的干预浓度分别为1 mmol/L和0.04 μg/mL。

按2.4气相色谱-质谱条件进代谢物的分离分析，最终得到典型的总离子流图（图1）。从代谢物峰的相对强度可以看出，对照组与NAM组代谢轮廓比较相似，而AmB组和联用组与对照组相比存在明显差异。将原始数据按2.5的方法进行处理并使用PLS-DA分析，结果如图2所示。对照组和NAM组未有明显分离，表明该剂量下的烟酰胺的干预未导致白念珠菌的代谢轮廓发生显著变化。AmB组及联用组与对照组分离趋势明显，表明该剂量下的药物干预引起了白念珠菌代谢轮廓的显著变化。AmB组与联用组相比，代谢轮廓也存在明显差异，表明两组间的代谢物差异较大。

将对照组、NAM组、AmB组和联用组的胞内代谢物的变化情况进行统计分析和可视化呈现，结果如表2和图3所示。

与对照组相比，联用组有28个代谢物发生变化；而AmB组与联用组比较，差异代谢物减少至19个。NAM组和对照组之间的聚类分组不明显，说明该剂量下的NAM未影响白念珠菌的生长和代谢。AmB单独干预时对白念珠菌具有一定的抑制作用，与对照组相比有23个代谢物发生显著变化。

利用 MetaboAnalyst 5.0对差异代谢物进行通路分析，发现主要涉及甘油酯代谢、氨基酸代谢、三羧酸循环等通路的变化。联用组与对照组相比有28个代谢物发生变化，其中5个代谢物在AmB单独给药时未发生变化。此外，联用组与AmB族相比有19个代谢物发生显著变化，其中4个代谢物（L-亮氨酸，L-异亮氨酸，L-天冬氨酸，纤维醇）含量变化趋势明显（FC值>1.5或<0.5），表明联合用药在一定程度上改变了AmB抑制白念珠菌的作用模式。

氨基酸是真核生物正常生命活动中不可或缺的物质，氨基酸的代谢失衡会导致白念珠菌的生长和繁殖缺乏能量供应，同时影响氮平衡、糖类代谢等相关通路^[10]。氨基酸代谢异常是联合给药干预后白念珠菌的主要特征之一。与对照组相比，联用组中的L-亮氨酸、L-脯氨酸、L-异亮氨酸、L-丝氨酸、L-天冬氨酸的FC值>1.5，含量发生显著变化，而这些代谢物在AmB单独干预时的变化没有统计学差异（见图4A和4B），表明在此剂量下AmB单独干预对于白念珠菌的轻微抑制作用并没有对其氨基酸的合成和代谢造成很大影响。然而，加入NAM后氨基酸含量的变化清晰地呈现了氨基酸代谢通路的变化。支链氨基酸含量的变化与机体的能量代谢密切相关，L-亮氨酸和L-异亮氨酸含量升高，推测可能由于NAM和AmB联用后激活了作用于支链氨基酸合成和代谢通路中的相关酶，并对外界刺激做出了应激反应。

此外，三羧酸循环是生物体内营养物质氧化的主要过程，与白念珠菌的CO₂感应及菌丝发育的调控密切相关，该过程活性下降会导致白念珠菌利用碳源的能力降低，导致细胞的生长速度明显放缓^[11]。与对照组相比，AmB组和联用组中柠檬酸、琥珀酸、苹果酸等三羧酸循环相关代谢物FC值均>1.5，表明给药后三羧酸循环相关代谢物均出现蓄积，但联用组蓄积情况反而低于AmB组。与对照组相比，AmB组和联用组中的羟胺乙醚、乙醇胺、甘油、1,4-丁二胺、软脂酸、甲基腺苷、半乳糖醇的FC值>1.5，含量明显升高，并且联用组中的含量显著高于AmB组（见图4C和4D）。

在白念珠菌中，鸟氨酸经过鸟氨酸脱羧酶能代谢为腐胺，而腐胺又能进一步转化为精胺、亚精胺等其他多胺。已有研究表明，干扰多胺合成通路能增强AmB抑制白念珠菌生物被膜合成的作用^[12]，推测NAM可能干扰了白念珠菌的多胺合成通路，从而增强AmB对白念珠菌的抑制作用。总之，以上结果表明，NAM与AmB联用并不仅仅增强了AmB原有的作用途径，还在一定程度上改变了其单独干预时的作用模式。

本研究利用气相色谱-质谱联用技术分析NAM与AmB作用下白念珠菌的代谢轮廓，筛选出的差异代谢物包括氨基酸、有机酸、多胺、糖类等成分，且涉及白念珠菌的氨基酸合成、三羧酸循环、甘油酯代谢等通路。NAM与AmB联用后，与对照组相比，部分代谢物变化趋势与单独使用AmB时一致，且变化幅度更大；同时也有部分代谢物在AmB单独作用时未发生变化，而联用后则发生显著变化，说明NAM增强了AmB在原代谢通路中的作用，同时在一定程度上改变了其作用途径。因此，推测NAM与AmB联用后可能通过影响白念珠菌的三羧酸循环，干扰其氨基酸代谢，影响其多胺合成等途径，发挥对AmB的增效作用。