留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

应中央军委要求,2022年9月起,《药学实践杂志》将更名为《药学实践与服务》,双月刊,正文96页;2023年1月起,拟出版月刊,正文64页,数据库收录情况与原《药学实践杂志》相同。欢迎作者踊跃投稿!

发形霞水母触手提取物的蛋白稳定性及其溶血活性

常银龙 肖良 郑杰民 王倩倩 张黎明

常银龙, 肖良, 郑杰民, 王倩倩, 张黎明. 发形霞水母触手提取物的蛋白稳定性及其溶血活性[J]. 药学实践与服务, 2014, 32(6): 434-439. doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.2014.06.009
引用本文: 常银龙, 肖良, 郑杰民, 王倩倩, 张黎明. 发形霞水母触手提取物的蛋白稳定性及其溶血活性[J]. 药学实践与服务, 2014, 32(6): 434-439. doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.2014.06.009
CHANG Yinlong, XIAO liang, ZHENG Jiemin, WANG Qianqian, ZHANG Liming. Protein stability and hemolytic activity of tentacle extract from the jellyfish Cyanea capillata[J]. Journal of Pharmaceutical Practice and Service, 2014, 32(6): 434-439. doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.2014.06.009
Citation: CHANG Yinlong, XIAO liang, ZHENG Jiemin, WANG Qianqian, ZHANG Liming. Protein stability and hemolytic activity of tentacle extract from the jellyfish Cyanea capillata[J]. Journal of Pharmaceutical Practice and Service, 2014, 32(6): 434-439. doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.2014.06.009

发形霞水母触手提取物的蛋白稳定性及其溶血活性

doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.2014.06.009
基金项目: 国家自然科学基金(41176126;81370833).

Protein stability and hemolytic activity of tentacle extract from the jellyfish Cyanea capillata

  • 摘要: 目的 探讨不同环境因素和处理方法对发形霞水母(Cyanea capillata)触手提取物(tentacle extract, TE)蛋白稳定性及其溶血活性的影响。 方法 结合蛋白浓度测定、溶血活性检测和SDS-PAGE分析等方法研究不同环境因素和处理方法对TE蛋白稳定性及其溶血活性的影响。 结果 TE溶血活性呈明显的剂量依赖关系,其半数溶血分数HU50=226 μg/ml;40℃水浴1 h,能去除TE中大量杂蛋白,但仍保持显著溶血活性;TE在4℃放置28 d,其溶血活性保持稳定,25℃下3 d内其溶血活性变化不明显;pH值对TE溶血活性的影响呈钟形曲线,在pH 6.0~11.0之间活性相对稳定,pH 8.0是TE保持溶血活性的最优pH条件;不同缓冲液对TE稳定性及其溶血活性影响显著,浓度大于26%的硫酸铵溶液对TE溶血蛋白具有良好的盐析作用。 结论 40℃水浴1 h预处理可显著减少TE中非活性蛋白组分,并降低样品黏性;4℃和pH 8.0是TE保持蛋白稳定性和溶血活性的最适条件;浓度大于26%的硫酸铵盐析有利于溶血蛋白组分富集。
  • [1] Tibballs J. Australian venomous jellyfish, envenomation syndromes, toxins and therapy[J]. Toxicon, 2006, 48(7): 830-859.
    [2] Kang C, Munawir A, Cha M, et al. Cytotoxicity and hemolytic activity of jellyfish Nemopilema nomurai(Scyphozoa: Rhizostomeae)venom[J]. Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol, 2009, 150(1): 85-90.
    [3] Helmholz H, Ruhnau C, Schutt C, et al. Comparative study on the cell toxicity and enzymatic activity of two northern scyphozoan species Cyanea capillata (L) and Cyanea lamarckii (Peron & Leslieur)[J]. Toxicon, 2007, 50(1): 53-64.
    [4] Brinkman DL, Burnell JN. Biochemical and molecular characterisation of cubozoan protein toxins[J]. Toxicon, 2009, 54(8): 1162-1173.
    [5] Suput D. In vivo effects of cnidarian toxins and venoms. Toxicon, 2009, 54(8): 1190-1200.
    [6] Xiao L, He Q, Guo YF, et al. Cyanea capillata tentacle-only extract as a potential alternative of nematocyst venom: its cardiovascular toxicity and tolerance to isolation and purification procedures[J]. Toxicon, 2009, 53(1): 146-152.
    [7] Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding[J]. Anal Biochem, 1976, 72:248-254.
    [8] Rocha J, Peixe L, Gomes NCM, et al. Cnidarians as a source of new marine bioactive compounds-an overview of the last decade and future steps for bioprospecting[J]. Marine Drugs, 2011, 9(10): 1860-1886.
    [9] Feng J, Yu H, Xing R, et al. Partial characterization of the hemolytic activity of the nematocyst venom from the jellyfish Cyanea nozakii kishinouye[J]. Toxicol In Vitro, 2010, 24(6): 1750-1756.
    [10] Chung JJ, Ratnapala LA, Cooke IM, et al. Partial purification and characterization of a hemolysin (CAH1) from Hawaiian box jellyfish (Carybdea alata) venom[J]. Toxicon, 2001, 39(7): 981-990.
    [11] Gusmani L, Avian M, Galil B, et al. Biologically active polypeptides in the venom of the jellyfish Rhopilema nomadica[J]. Toxicon, 1997, 35(5): 637-648.
    [12] Nomura JT, Sato RL, Ahern RM, et al. A randomized paired comparison trial of cutaneous treatments for acute jellyfish(Carybdea alata) stings[J]. Am J Emerg Med, 2002, 20(7): 624-626.
    [13] Li R, Yu H, Xing R, et al. Isolation, identification and characterization of a novel antioxidant protein from the nematocyst of the jellyfish Stomolophus meleagris[J]. Int J Biol Macromol, 2012, 51(3): 274-278.
  • [1] 龚亚, 李敏, 曹健, 樊莉.  高效液相色谱法考察8种常用对照品溶液的稳定性 . 药学实践与服务, 2021, 39(5): 426-430. doi: 10.12206/j.issn.1006-0111.202101025
    [2] 陶春, 吴博, 黄爱文, 王天宇, 王佳琳, 宋洪涛.  复方酮康唑软膏的制备与稳定性考察 . 药学实践与服务, 2017, 35(6): 535-538,550. doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.2017.06.013
    [3] 彭贤东, 龙凤, 唐志立, 谢军.  替硝唑螺内酯乳膏稳定性研究 . 药学实践与服务, 2013, 31(4): 290-292,299. doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.2013.04.014
    [4] 尤本明, 宋洪杰.  盐酸普鲁卡因注射液稳定性考察 . 药学实践与服务, 2011, 29(2): 125-127.
    [5] 周闺臣, 刘青锋, 鲁莹, 钟延强.  溶菌酶的处方设计前稳定性研究 . 药学实践与服务, 2010, 28(1): 11-13,44.
    [6] 蔡滨欣, 郭玉峰, 张智, 肖良, 张黎明.  发形霞水母触手提取物对大鼠离体心脏传导系统的影响 . 药学实践与服务, 2010, 28(2): 112-113,125.
    [7] 兰芝荟, 刘延彤, 何毅刚, 李茂星, 杜青云, 贾正平.  镰形棘豆总黄酮霜剂的处方筛选及稳定性考察 . 药学实践与服务, 2010, 28(6): 422-425.
    [8] 黄涛阳, 赵树进, 翁燕君, 邓朝晖.  Medilox氧化电位水的稳定性及对手和物体表面消毒效果 . 药学实践与服务, 2009, 27(5): 370-372.
    [9] 王燕琼, 张春, 陈敏玲, 张顺国, 李岚, 姜华.  5种临床常用静脉维持药物再配制后的稳定性 . 药学实践与服务, 2008, (6): 420-421,458.
    [10] 王艳萍, 严晓鹏, 薛万俐, 史沛海.  氟罗沙星注射液稳定性及其有效期预测 . 药学实践与服务, 2004, (1): 9-10.
    [11] 王晓波, 王敬国, 袭荣刚, 张治然.  罗红霉素电子药膜的研制及其稳定性考察 . 药学实践与服务, 2003, (1): 18-20.
    [12] 封大慧, 舒薇.  普鲁卡因庆大霉素合剂的稳定性观察 . 药学实践与服务, 1999, (3): 153-154.
    [13] 刘放, 陈瑛, 王斐珍, 沈文照.  注射用卡铂的含量测定及稳定性试验 . 药学实践与服务, 1998, (5): 294-296.
    [14] 史亚柱, 隋广志, 高忠民, 王然.  泰能与6种输液配伍的稳定性研究 . 药学实践与服务, 1998, (1): 48-51.
    [15] 陈文诚.  复方氧氟沙星鼻喷剂的稳定性实验 . 药学实践与服务, 1998, (2): 95-96.
    [16] 景利, 曾仁杰, 刘明蓉, 孙伟张, 青磊, 刘丰丰.  控释氧氟沙星人工骨的质量控制及稳定性研究 . 药学实践与服务, 1996, (4): 225-227.
    [17] 陈斌, 陈伟, 贺全山.  氯唑沙宗片稳定性的研究 . 药学实践与服务, 1996, (4): 229-231.
    [18] 李建华, 郭冬英.  盐酸丁卡因注射液稳定性实验 . 药学实践与服务, 1996, (6): 342-343.
    [19] 郭涛, 迟卫国, 牟平, 丁立新.  心舒口服液的稳定性考察 . 药学实践与服务, 1996, (6): 337-338.
    [20] 郑慰.  盐酸环丙沙星滴眼液稳定性的研究 . 药学实践与服务, 1994, (4): 12-13.
  • 加载中
计量
  • 文章访问数:  2228
  • HTML全文浏览量:  175
  • PDF下载量:  208
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2013-11-25
  • 修回日期:  2014-07-07

发形霞水母触手提取物的蛋白稳定性及其溶血活性

doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.2014.06.009
    基金项目:  国家自然科学基金(41176126;81370833).

摘要: 目的 探讨不同环境因素和处理方法对发形霞水母(Cyanea capillata)触手提取物(tentacle extract, TE)蛋白稳定性及其溶血活性的影响。 方法 结合蛋白浓度测定、溶血活性检测和SDS-PAGE分析等方法研究不同环境因素和处理方法对TE蛋白稳定性及其溶血活性的影响。 结果 TE溶血活性呈明显的剂量依赖关系,其半数溶血分数HU50=226 μg/ml;40℃水浴1 h,能去除TE中大量杂蛋白,但仍保持显著溶血活性;TE在4℃放置28 d,其溶血活性保持稳定,25℃下3 d内其溶血活性变化不明显;pH值对TE溶血活性的影响呈钟形曲线,在pH 6.0~11.0之间活性相对稳定,pH 8.0是TE保持溶血活性的最优pH条件;不同缓冲液对TE稳定性及其溶血活性影响显著,浓度大于26%的硫酸铵溶液对TE溶血蛋白具有良好的盐析作用。 结论 40℃水浴1 h预处理可显著减少TE中非活性蛋白组分,并降低样品黏性;4℃和pH 8.0是TE保持蛋白稳定性和溶血活性的最适条件;浓度大于26%的硫酸铵盐析有利于溶血蛋白组分富集。

English Abstract

常银龙, 肖良, 郑杰民, 王倩倩, 张黎明. 发形霞水母触手提取物的蛋白稳定性及其溶血活性[J]. 药学实践与服务, 2014, 32(6): 434-439. doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.2014.06.009
引用本文: 常银龙, 肖良, 郑杰民, 王倩倩, 张黎明. 发形霞水母触手提取物的蛋白稳定性及其溶血活性[J]. 药学实践与服务, 2014, 32(6): 434-439. doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.2014.06.009
CHANG Yinlong, XIAO liang, ZHENG Jiemin, WANG Qianqian, ZHANG Liming. Protein stability and hemolytic activity of tentacle extract from the jellyfish Cyanea capillata[J]. Journal of Pharmaceutical Practice and Service, 2014, 32(6): 434-439. doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.2014.06.009
Citation: CHANG Yinlong, XIAO liang, ZHENG Jiemin, WANG Qianqian, ZHANG Liming. Protein stability and hemolytic activity of tentacle extract from the jellyfish Cyanea capillata[J]. Journal of Pharmaceutical Practice and Service, 2014, 32(6): 434-439. doi: 10.3969/j.issn.1006-0111.2014.06.009
参考文献 (13)

目录

    /

    返回文章
    返回